Изучение противофаговой активности дезинфектантов в качестве фактора подавления горизонтальной передачи генов

Изучение противофаговой активности дезинфектантов в качестве фактора подавления горизонтальной передачи генов

Автор: Афонюшкин В.Н., Черепушкина В.С., Татарчук О.П., Фролова О.А.

Журнал: Вестник Красноярского государственного аграрного университета @vestnik-kgau

Рубрика: Ветеринария и зоотехния

Статья в выпуске: 4, 2020 года.

Бесплатный доступ

Ограничение использования антибиотиков в сельском хозяйстве в сочетании с ростом частоты появления антибиотико-резистентных штаммов бактерий стимулирует все более широкое использование бактериофагов в ветеринарии и медицине. Выявление противофаговой активности дезинфектантов имеет самостоятельное значение для медицины, ветеринарии и пищевой промышленности во всем мире. На предприятиях мясной промышленности целесообразно использовать дезинфектанты, снижающие вероятность горизонтального переноса нежелательной генетической информации путем инактивации ДНК, в том числе в составе бактериофагов. Цель исследования - изучение воздействия некоторых дезинфектантов на эффективность фаговой трансдукции E. coli бактериофагом М13. Заражение бактериофагом штамма кишечной палочки с дефектом гена галактозидазы приводило к тому, что колонии E.coli приобретали на среде «Уриселект 4» красную окраску. Изучали противофаговую активность 4 дезинфектантов по способности подавлять перенос гена галактозидазы в E.coli с помощью нелитического бактериофага М13...

Еще

Бактериофаг, персульфат калия, глутаральдегид, час, дезинфекция, переработка мяса, антибиотико-резистентность, трансдукция

Короткий адрес: https://sciup.org/140248956

IDR: 140248956   |   DOI: 10.36718/1819-4036-2020-4-88-96

Список литературы Изучение противофаговой активности дезинфектантов в качестве фактора подавления горизонтальной передачи генов

  • Salvat G., Colin P. Cleaning and disinfection practice in the meat industries of Europe // Rev Sci Tech. 1995 Jun;14(2):313-41.
  • Verraes C., Van Boxstael S., Van Meervenne E., Van Coillie E., Butaye P., Catry B., de Schaetzen M.-A., Van Huffel X., Imberechts H., Dierick K., Daube G., Saegerman C., De Block J., Dewulf J., Herman L. Antimicrobial Resistance in the Food Chain: A Review // Int. J. Environ. Res. Public Health 2013, 10. P. 2643-2669.
  • Афонюшкин В.Н., Табанюхов К.А, Черепушкина В.С. [и др.]. Влияние дезинфицирующих средств на основе персульфата калия, перекиси водорода, глутаральдегида и четвертичных аммонийных соединений на генетический материал бактериальных патогенов, специфичных для мясоперерабатывающей промышленности // Развитие биотехнологических и постгеномных технологий для оценки качества сельскохозяйственного сырья и создания продуктов здорового питания: мат-лы 18-й Междунар. науч.-практ. конф. М., 2015. Т. 1. С. 52-59.
  • Allué-Guardia A., Martínez-Castillo A., Munie-sa M. Persistence of infectious Shiga toxin-encoding bacteriophages after disinfection treatments. Appl. Environ. Microbiol. 2014; 80:2142 - 2149. Doi: 10.1128/AEM.04006-13.
  • D’Herelle F. Sur un microbe invisible antago-niste des bacilles dysentériques. CR Acad. Sci. Paris. 1917; 165:373-375.
  • García P., Martínez B., Obeso J. M., and Rodríguez A. (2008). Bacteriophages and their application in food safety. Lett. Appl. Microbiol. 47, 479-485.
  • DOI: 10.1111/j.1472-765X.2008.02458.x
  • Hernández A., Ruiz F.M., Romero A., Martínez J.L. (2011). The binding of triclosan to SmeT, the repressor of the multidrug efflux pump SmeDEF, induces antibiotic resistance in Stenotro-phomonas maltophilia. PLoS Pathog. 7:e1002103.
  • DOI: 10.1371/journal.ppat.1002103
  • Hawkshead Lane Phage Transduction // Methods Mol Biol. 2016; 1476:177-85.
  • DOI: 10.1007/978-1-4939-6361-4_13
  • De Melo A.G., Levesque S., Moineau S. Phages as friends and enemies in food processing. Curr. Opin. Biotechnol. 2017; 49:185-190.
  • DOI: 10.1016/j.copbio.2017.09.004
  • Маниатис Фрич Э., Сэмбрук Дж. Молекулярное клонирование. М.: Мир, 1984. 479 с.
  • Perry J.D., Butterworth L.A., Nicholson A., Appleby M.R., Orr K.E. Evaluation of a new chromogenic medium, UriSelect4, for the isolation and identification of urinary tract pathogens // J. Clin. Pathol 2003. Vol. 56: P. 528-553.
  • Методические указания по оценке эффективности дезинфицирующих средств, предназначенных для обеззараживания различных объектов и санитарной обработки людей. Утв. МЗ СССР 20 августа 1970 г. № 859-70. М., 1970.
  • Student. The probable error of a mean // Biometrika. 1908. № 6 (1). P. 1-25.
  • Fernández L., Escobedo S., Gutiérrez D., Portilla S., Martínez B., García P., Rodríguez A. Bacteriophages in the dairy environment: From enemies to allies. Antibiotics. 2017;6:E27.
  • DOI: 10.3390/antibiotics6040027
  • Donnelly A., Yata T., Bentayeb K. i, Suwan K., Hajitou A. Bacteriophage Mediates Efficient Gene Transfer in Combination with Conventional Transfection Reagents // Viruses. 2015 Dec; 7(12): 6476-6489.
  • DOI: 10.3390/v7122951
  • Blattner F.R., Plunkett G, Bloch C.A., Perna N.T., Burland V., Riley M., Collado-Vides J., Glasner J.D., Rode C.K., Mayhew G.F., Gregor J., Davis N.W., Kirkpatrick H.A., Goeden M.A., Rose D.J., Mau B., Shao Y. The complete genome sequence of Escherichia coli K-12// Science. 1997 Sep 5;277(5331). P. 1453-62.
  • Karch H., Tarr P., Bielaszewska M. Enterohaemorrhagic Escherichia coli in human medicine // Int J Med Microbiol. Vol. 295. Vyp. 6-7. P. 405-18.
  • Campagna C., Villion M., Labrie S.J., Duchaine C., Moineau S. Inactivation of dairy bacteriophages by commercial sanitizers and disinfectants. Int. // J. Food Microbiol. 2014; 171:41-47. 10.1016/j.ijfoodmicro. 2013.11.012.
  • DOI: 10.1016/j.ijfoodmicro.2013.11.012
  • Hayes S., Murphy J., Mahony J., Lugli G.A., Ventura M., Noben J.P., Franz C.M., Neve H., Nauta A., van Sinderen D. Biocidal inactivation of Lactococcus lactis bacteriophages: Efficacy and targets of commonly used sanitizers. Front. Microbiol. 2017; 8:107. 10.3389/fmicb. 2017.00107.
  • DOI: 10.3389/fmicb.2017.00107
  • Atamer Z., Dietrich J., Müller-Merbach M., Neve H., Heller K.J., Hinrichs J. Screening for and characterization of Lactococcus lactis bacteriophages with high thermal resistance. Int. Dairy J. 2009; 19:228-235. 10.1016/ j.idairyj.2008.10.012.
  • DOI: 10.1016/j.idairyj.2008.10.012
  • Balson E.W., Lawson A. The potentiometric determination of polypeptides and aminoacids: The formaldehyde titration // Biochem J. 1936 Jul; 30(7), P.1257-1263.
  • Jia Zhishen; Shen Dongfeng; Xu Weiliang (2001). Synthesis and antibacterial activities of quaternary ammonium salt of chitosan // CarbohydrateResearch333 (1): 1-6.
  • DOI: 10.1016/S0008-6215(01)00112-4
  • Bauer T., Hammes W.P., Haase N.U., Hertel C. Effect of food components and processing parameters on DNA degradation in food // Environ. Biosaf. Res. 2004, 3, P. 215-223.
  • Straub J.A., Hertel C., Hammes W.P. A 23S rDNA-targeted polymerase chain reaction-based system for detection of Staphylococcus aureus in meat starter cultures and dairy products // J. Food Protect. 1999, 62, P.1150-1156.
  • Афонюшкин В.Н., Юшков Ю.Г., Донченко А.С. [и др.]. Обнаружение генов патогенности и антибиотикорезистентности S. enterica у некоторых микроорганизмов сем. Enterobacteriaceae // Вестник российской сельскохозяйственной науки. 2012. № 2. С. 67-69.
Еще
Статья научная
SciUp 2024 © 2024 ©