Стволовые опухолевые клетки меланомы. Поражение костного мозга. Обзор и представление собственных данных

Стволовые опухолевые клетки меланомы. Поражение костного мозга. Обзор и представление собственных данных

Автор: Чулкова С.В., Чернышева О.А., Маркина И.Г., Купрышина Н.А., Тупицын Н.Н.

Журнал: Вестник Российского научного центра рентгенорадиологии Минздрава России @vestnik-rncrr

Рубрика: Молекулярная медицина

Статья в выпуске: 4 т.19, 2019 года.

Бесплатный доступ

Меланома - агрессивная опухоль, отличающаяся ранним процессом метастазирования и лекарственной резистентностью, которую связывают с особой популяцией клеток - опухолевых стволовых клеток. Одним из органов, поражение которого установлено при меланоме, является костный мозг. Идентификация опухолевых стволовых клеток меланомы в костном мозге возможна на основании отличительных стволовоклеточных маркеров, одним из которых является CD133. В данном исследовании методом проточной цитометрии проанализировано 47 образцов костного мозга больных меланомой с различными стадиями процесса. Установлено наличие Syto41+CD45-HMB-45+ клеток (57,4%), среди которых обнаружена популяция Syto41+CD45-HMB-45+CD133+ клеток.

Еще

Стволовые опухолевые клетки, костный мозг, меланома, проточная цитометрия

Короткий адрес: https://sciup.org/149132116

IDR: 149132116

Список литературы Стволовые опухолевые клетки меланомы. Поражение костного мозга. Обзор и представление собственных данных

  • Чулкова С.В., Маркина И.Н., Антипова А.С. и др. Роль опухолевых стволовых клеток в прогнозе и канцерогенезе меланомы. Вестник РНЦРР. 2018. Т. 18. № 4. С. 100-116.
  • Чулкова С.В. Биомаркеры стволовых клеток рака желудка. Вопросы биологической медицинской и фармацевтической химии. 2018. № 10. С. 11-18. DOI: 10.29296/25877313-2018-10-02
  • Чулкова С.В., Маркина И.Г., Чернышева О.А. и др. Роль стволовых опухолевых клеток в развитии лекарственной резистентности меланомы. Российский биотерапевтический журнал. 2019. Т. 18. № 2. С. 6-15. 10.17650/1726-9784- 2019-18-2-6-14. DOI: 10.17650/1726-9784-2019-18-2-6-14
  • Alessio A.L., Biagioni F., Bianchini S.Б., et al. Inhibition of uPAR-TGFβ crosstalk blocks MSC-dependent EMT in melanoma cells. J Mol Med (Berl). 2015. V. 93. No. 7. P. 783-794. DOI: 10.1007/s00109-015-1266-2
  • American Cancer Society. Cancer Fact and Figures. 2018. (https://www.cancer.org/research/cancer-facts-statistics/all-cancer-facts-figures/cancerfacts-figures-2018.html)
  • Argüello F., Baggs B.B., Frantz C.N. A murine model of experimental metastasis to bone and bone marrow. Cancer Res. 1988. V. 48. No. 23. P. 6876-6881.
  • Bach P., Abel T., Hoffmann C., et al. Specific elimination of CD133+ tumor cells with targeted oncolytic measles virus. Cancer Res. 2013. V. 73. No. 2. P. 865-874.
  • Calvi L.M., Adams G.B., Weibrecht K.W., et al. Osteoblastic cells regulate the haematopoietic stem cell niche. Nature. 2003. V. 425. P. 841-846.
  • DOI: 10.1038/nature02040
  • Chernysheva O.A., Markina I., Demidov L., et al. Bone Marrow Involvement in Melanoma. Potentials for Detection of Disseminated Tumor Cells and Characterization of Their Subsets by Flow Cytometry. Cells. 2019. V. 8. No. 6. E627.
  • DOI: 10.3390/cells8060627
  • Demou Z.N., Hendrix M.J. Microgenomics profile the endogenous angiogenic phenotype in subpopulations of aggressive melanoma. J Cell Biochem. 2008. V. 105. No. 2. P. 562-573.
  • DOI: 10.1002/jcb.21855
  • Fodstad O., Faye R., Hoifodt H.K., et al. Immunobead-based detection and characterization of circulating tumor cells in melanoma patients. Recent Results Cancer Res. 2001. V. 158. P. 40-50.
  • DOI: 10.1007/978-3-642-59537-0_5
  • Galanis E., Hartmann L.C., Cliby W.A., et al. Phase I trial of intraperitoneal administration of an oncolytic measles virus strain engineered to express carcinoembryonic antigen for recurrent ovarian cancer. Cancer Research. 2010. V. 70. No. 3. P. 875-882.
  • Hanahan D., Weinberg R.A. Hallmarks of cancer: the next generation. Cell. 2011. V.144. No. 5. P. 646-674.
  • DOI: 10.1016/j.cell.2011.02.013
  • Hendrix M.J.C., Seftor E.A., Hess A.R., Seftor R.E.B. Vasculogenic mimicry and tumour-cell plasticity: Lessons from melanoma. Nat Rev Cancer. 2003. V. 3. No. 6. P. 411-421.
  • DOI: 10.1038/nrc1092
  • Hendrix M.J., Seftor E.A., Meltzer P.S. Expression and functional significance of VEcadherin in aggressive human melanoma cells: Role invasculogenic mimicry. Proc Natl Acad Sci USA. 2001. V. 98. No. 14. P. 8018-8023.
  • DOI: 10.1073/pnas.131209798
  • Hendrix M.J., Seftor R.E.B., Seftor E.A., et al. Transendothelial function of human metastatic melanoma cells: Role of the microenvironment in cell-fate determination. Cancer Res. 2002. V. 62. No. 3. P.665-668.
  • Jain D., Singh T., Kumar N., Daga M.K. Metastatic malignant melanoma in bone marrow with occult primary site: A case report with review of literature. Diagn Pathol. 2007. V. 2. Article ID 38.
  • DOI: 10.1186/1746-1596-2-38
  • Jordan C.T., Guzman M.L., Noble M. Cancer stem cells. New England Journal of Medicine. 2006. V. 355. No. 12. P. 1253-1261.
  • DOI: 10.1056/NEJMra061808
  • Karimkhani C., Green A.C., Nijsten T., et al. The global burden of melanoma: results from Global Burden of Disease study 2015. Br J Dermatol. 2017. V. 177. No. 1. P. 134-140.
  • DOI: 10.1111/bjd.15510
  • Klein W.M., Wu B.P., Zhao S., et al. Increased expression of stem cell markers in malignant melanoma. Mod Pathol. 2007. V. 20. No. 1. P. 102-107.
  • Larue L., Delmas V. The WNT/Beta-catenin pathway in melanoma. Front Biosci. 2006. V. 11. P. 733-742. doi: 10.2741/1831.
  • Monzani E., Facchetti F., Galmozzi E., et al. Melanoma contains CD133 and ABCG2 positive cells with enhanced tumourigenic potential. Eur J Cancer. 2007. V. 43. No. 5. P. 935-946.
  • DOI: 10.1016/j.ejca.2007.01.017
  • Quintana E., Shackleton M., Sabel M.S., et al. Efficient tumor formation by single human melanoma cells. Nature. 2008. V. 456. No. 7222. P. 593-598.
  • DOI: 10.1038/nature07567
  • Rappa G., Fodstad O., Lorico A. The stem cell-associated antigen CD133 (Prominin-1) is a molecular therapeutic target for metastatic melanoma. Stem Cells. 2008. V. 26. No.12. P. 3008-3017.
  • DOI: 10.1634/stemcells.2008-0601
  • Ronald A., Ghossein R.A., Coit D., et al. Prognostic Significance of Peripheral Blood and Bone Marrow Tyrosinase Messenger RNA in Malignant Melanoma. Clin Cancer Res. 1998. V. 4. No. 2. P. 419-428.
  • Schatton T., Frank M.H. Cancer stem cells and human malignant melanoma. Pigment Cell Melanoma Res. 2008. V. 21. No. 1. P. 39-55. 10.1111/j.1755- 148X.2007.00427.x.
  • DOI: 10.1111/j.1755-148X.2007.00427.x
  • Schmohl J.U., Vallera D.A. CD133 Selectively Targeting the Root of Cancer. Toxins (Basel). 2016. V. 8. No. 6. E165.
  • DOI: 10.1158/0008-5472.CAN-12-2221
  • Strizzi L., Hardy K.M., Kirsammer G.T., et al. Embryonic signaling in melanoma: potential for diagnosis and therapy. Lab Invest. 2011. V. 91. No. 6. P. 819-824.
  • DOI: 10.1038/labinvest.2011.63
  • Wang Z., Ouyang G. Periostin: a bridge between cancer stem cells and their metastatic niche. Cells stem cells. 2012. V. 10. No. 2. P.111-112.
  • DOI: 10.1016/j.stem.2012.01.002
  • Wick M.R., Swanson P.E., Rocamora A. Recognition of malignant melanoma by monoclonal antibody HMB-45. An immunohistochemical study of 200 para n-embedded cutaneous tumors. J Cutan Pathol. 1988. V. 15. No. 4. P. 201-207. 10.1111/j.1600- 0560.1988.tb00544.x.
  • DOI: 10.1111/j.1600-0560.1988.tb00544.x
  • Yoo S.Y., Bang S.Y., Jeong S.N., et al. A cancer-favoring oncolytic vaccinia virus shows enhanced suppression of stem-cell like colon cancer. Oncotarget. 2016. V. 7. No. 13. P. 16479-16489.
  • DOI: 10.18632/oncotarget.7660
  • Zhang J., Niu C., Ye L., et al. Identification of the haematopoietic stem cell niche and control of the niche size. Nature. 2003. V. 425. No. 6960. P. 836-841.
  • DOI: 10.1038/nature02041
Еще
Статья научная
SciUp 2024 © 2024 ©