Получение удвоенных гаплоидов Brassica purpuraria

Автор: Козарь Елена Викторовна, Коротцева Ксения Святославовна, Романова Ольга Витальевна, Чичварина Ольга Александровна, Кан Людмила Юрьевна, Ахраменко Владислав Анатольевич, Домблидес Елена Алексеевна

Журнал: Овощи России @vegetables

Рубрика: Селекция и семеноводство сельскохозяйственных растений

Статья в выпуске: 6 (50), 2019 года.

Бесплатный доступ

Актуальность. Овощная культура Brassica rapa L. ssp. chinensis (L.) Hanelt var. purpuraria (L.H. Bailey) Hanelt (синонимы: Brassica campestris L. var. purpurea Bailey; Brassica rapa L. ssp. chinensis var. purpurea) в последние годы набирает популярность как объект генетико-молекулярных исследований и как овощное растение ввиду высокого содержания биологически активных веществ и хозяйственно ценных признаков. Эффективной технологии получения DH-растений для ускорения селекционного процесса у этой культуры еще не разработано, поэтому исследования в этой области актуальны. Материалы и методы. В исследование включены два сортообразца из коллекции ФГБНУ «Федеральный исследовательский центр Всероссийский институт генетических ресурсов растений имени Н.И. Вавилова» (ВИР): №1301(Китай) и №1357(Нидерланды). В ходе экспериментов использовали стандартный протокол получения DH-растений в культуре изолированных микроспор in vitro и протокол с добавлением нитрата серебра (AgNO3) в питательную среду для стимулирования индукции эмбриогенеза...

Еще

Культура изолированных микроспор, удвоенные гаплоиды, андрогенез, регенерация растений, проточная цитометрия

Короткий адрес: https://readera.org/140245794

IDR: 140245794   |   DOI: 10.18619/2072-9146-2019-6-10-18

Список литературы Получение удвоенных гаплоидов Brassica purpuraria

  • Alexander H, Haasen P. Dislocations and Plastic Flow in the Diamond Structure. Solid State Physics. 1969;22:27-158.
  • Asif M. Progress and Opportunities of Doubled Haploid Production. Cham: Springer International Publishing. 2013.
  • Caredda S, Clement C. Androgenesis and albinism in Poaceae: influence of genotype and carbohydrates. Anther and Pollen: From Biology to Biotechnology. 1999;211-226.
  • Chen CC, Lin MH. Induction of rice plantlets from anther culture. Bot. Bull. Acad. Sin. 1976;17:18-24.
  • Chen X, Zhu Z et al. Glucosinolates in Chinese Brassica campestris Vegetables: Chinese Cabbage, Purple Cai-tai, Choysum, Pakchoi, and Turnip. Hort Science. 2008;43(2):571-574.
  • Chu, P. et al. ITRAQ-based quantitative proteomics analysis of Brassica napus leaves reveals pathways associated with chlorophyll deficiency. J. Proteomics. 2014;113,244-259.
  • Clapham D. Haploid Hordeum plants from anthers in vitro. Z. Pflanzenzucht. 1973;69:142-155.
  • Dunwell JM. Haploids in flowering plants: origins and exploitation. Plant Biotechnol J. 2010;8:377-424.
  • Ferrie AMR, Caswell KL. Isolated microspore culture techniques and recent progress for haploid and doubled haploid plant production. Plant Cell Tiss Org Cult. 2011;104:301-309.
  • Ferrie AMR. Microspore culture of Brassica species. Doubled haploid production in crop plants (Ed. M. Maluszynski et al.). Kluwer, Dordrecht. 2003:205-215.
  • Gao Y, Jia J, Cong J et al. Non-ionic surfactants improved microspore embryogenesis and plant regeneration of recalcitrant purple flowering stalk (Brassica campestris ssp. chinensis var. purpurea Bailey). In Vitro Cellular & Developmental Biology - Plant. 2019; p.1-8.
  • DOI: 10.1007/s11627-019-10033-3
  • Genovesi AD, Magill CW. Improved rate of callus and green plant production from rice anther culture following cold shock. Crop Sci. 1979;19:662-664.
  • Guo N, Wu J, Zheng S et al. Anthocyanin profile characterization and quantitative trait locus mapping in zicaitai (Brassica rapa L. ssp. chinensis var. purpurea). Mol Breeding. 2015;35:113.
  • DOI: 10.1007/s11032-015-0237-1
  • Haliloglu K, Baenziger PS. The effects of age and size of wheat (Triticum aestivum L.) anther culture-derived embryos on regeneration of green and albino plantlets. Israel J. Plant Sci. 2003;51:207-212.
  • Huang H. The relative efficiency of microspore culture and chromosome elimination as methods of haploid production in Hordeum vulgare L. Z. Pflanzenzucht. 1984;92:22-29.
  • Jahne A, Lorz H. Cereal microspore culture. Plant Sci. 1995;109:1-12.
  • Jahne, A., Lazzeri, P.A., Jager-Gussen, M., Lorz, H. Plant regenerationfrom embryonic cell suspensions derived from anther cultures of barley (Hordeum vulgare L.). Theor. Appl. Genet. 1991;82:74-80.
  • Kabir KMdR, Kwon S-W, Y-J Park and al. Application of Cobalt Chloride and Silver Nitrate for Efficient Microspore Culture of Brassica rapa ssp. Plant Tissue Cult. & Biotech. 2013;23(1):1-10.
  • Knudson S, Due IK, Anderson SB. Components of response in barley anther culture. Plant Breed. 1989;103:241-246.
  • Li G-H, Chen H-C, Liu J-L et al. A high-density genetic map developed by specif-ic-locus amplified fragment (SLAF) sequencing and identification of a locus controlling anthocyanin pigmentation in stalk of Zicaitai (Brassica rapa L. ssp. chinensis var. purpurea). BMC Genomics. 2019;20:343.
  • DOI: 10.1186/s12864-019-5693-2
  • Lichter R. Induction of haploid plants from isolated pollen of Brassica napus. Z. Pflanzenphysiol. 1982;105:427-434.
  • Maluszynski M, Kasha KJ, Forster BP, Szarejko I. Doubled haploid production in crop plants: a manual. Kluwer Academic. 2003.
  • Moieni A, Sarrafi A. Genetic analysis for haploid-regeneration responses of hexa-ploidy-wheat anther cultures. Plant Breed. 1995;114:247-249.
  • Murashige T, Skoog F. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco cultures. Physiologia Plantarum, 1962;15:473-497.
  • Na H., Kwak J.H., Chun C. The effect of plant growth regulators, activated charcoal and AgNO3 on microspore derived embryo formation in broccoli (Brassica oleracea L. var. italica). Hort. Environ. Biotechnol. 2011;52(5):524-529. 10.1007/s13580- 011-0034-7
  • DOI: 10.1007/s13580-011-0034-7
  • Pechan PM, Keller WA. Identification of potentially embryogenic microspores in Brassica napus. Physiol. Plant. 1988;74:377-384.
  • Smith HB. Photosynthetic pigmentation-variegations on a theme. Plant Cell. 1999;11:1-14.
  • Wang C, Li H, Li Y. Genetic characterization and fine mapping BrCER4 in involved cuticular wax formation in purple cai-tai (Brassica rapa L. var. purpurea). Mol Breeding. 2019;39:12.
  • DOI: 10.1007/s11032-018-0919-6
  • Wang T, Li HX, Zhang J. Initiation and development of microspore embryogenesis in recalcitrant purple flowering stalk (Brassica campestris ssp. chinensis var. purpurea Hort.) genotypes. Scientia Horticulturae. 2009;121(4):419-424.
  • Wang TT, Li HX, Zhang JH et al. Isolated microspore culture and plant regeneration in purple flowering stalk (Brassica campestris ssp. chinensis var. purpurea Hort.). J. Wuhan Botanical Research. 2004;22(6):569-5712004.
  • Wang Y, He Y, Yang M et al. Fine mapping of a dominant gene conferring chlorophyll- deficiency in Brassica napus. Scientific Reports. 2016;6:31419.
  • Wuhan Bot. Res. 22: 569-571 (in Chinese with English summary).Biddington NL, Sutherland RA and Robinson Ht. Silver nitrate increases embryo production in anther culture of Brussels sprouts. Ann. Bot. 1988;62:181-185.
  • Вюртц Т.С., Домблидес Е.А., Шмыкова Н.А., Федорова М.И., Кан Л.Ю., Домблидес А.С. Получение DH-растений в культуре микроспор моркови. Овощи России. 2017;(5):25-30.
  • DOI: 10.18619/2072-9146-2017-5-25-30
  • Домблидес Е.А. и др. Технология получения удвоенных гаплоидов в культуре микроспор семейства капустные (методические рекомендации). Коллектив авторов. ВНИИССОК. М.: Изд-во ВНИИССОК. 2016.
  • Козарь Е.В., Домблидес Е.А., Солдатенко А. В. Получение удвоенных гаплоидов редиса в культуре микроспор in vitro. Биотехнология в растениеводстве, животноводстве и ветеринарии. 2018:123-125
  • Козарь Е.Г. Биологическая активность вторичных метаболитов растений семейства Brassicaceae. Овощи России. 2011;1(10):46-53.
  • Козарь Е.Г., Кононков П.Ф., Гинс М.С., Байков А.А., Шестеперов А.А. Биологическая и антиоксидантная активность водяного кресса. Новые и нетрадиц. растения и перспективы их использования. Общерос. акад. нетрадиц. и редких растений (и др.). Москва. 2017:04-112.
  • Скапцов М.В., Смирнов С.В., Куцев М.Г., Шмаков А.И. Проблемы стандартизации в проточной цитометрии растений. Turczaninowia. 2016;19(3):120-122.
Еще
Статья научная