Мoрфолого-культуральные особенности клеток дрожжей S. cerevisiae различной плоидности в условиях осмотического стресса

Автор: Халилова Эсланда Абдурахмановна, Исламмагомедова Эльвира Ахмедовна, Котенко Светлана Цалистиновна, Абакарова Аида Алевтиновна, Аливердиева Динара Алиевна

Журнал: Известия Самарского научного центра Российской академии наук @izvestiya-ssc

Рубрика: Общая биология

Статья в выпуске: 2-1 т.20, 2018 года.

Бесплатный доступ

В данной статье рассматривается влияние осмотического стресса на морфолого - культуральные особенности гетерозиготного тетраплоида S. cerevisiae Y-503 и его дочернего штамма гетероталличного гаплоида S. cerevisiae DAW-3а. Принадлежность Y-503 и DAW-3а к таксону Saccharomyces подтверждена с помощью молекулярно-генетических методов. Обнаружено, что полипдоид Y-503 обладает преимущественной устойчивостью к солевому стрессу, выявлен больший размер клеток и колоний по сравнению с DAW-3а. Экстремально воздействующий фактор вызвал значительное торможение жизнедеятельности, но не размножение клеток, отмечено большее количество почкующихся клеток у штамма Y-503 (до 90 %).

Еще

Дрожжи s. cerevisiae, среда культивирования ypd, кислотность, осмостресс, морфология, клетка, колония

Короткий адрес: https://sciup.org/148205435

IDR: 148205435

Список литературы Мoрфолого-культуральные особенности клеток дрожжей S. cerevisiae различной плоидности в условиях осмотического стресса

  • Gao Q., Liou L.-C., Ren Q. et. al. Salt stress causes cell wall damage in yeast cells lacking mitochondrial DNA//Microbial Cell. 2014. V. 1 (3). P. 94-99.
  • Hohmann S. Osmotic Stress Signaling and Osmoadaptation in Yeasts//Microbiol Mol Biol Rev. 2002. V. 66 (2). P. 300-372.
  • Ren H., Wang X., Liu D. et. al. A glimpse of the yeast Saccharomyces cerevisiae responses to NaCl stress//African Journal of Microbiology Research. 2012. V. 6 (4). P. 713-718.
  • Chae Y.K., Kim S.H., Ellinger J.E. et. al. Dosage Effects of Salt and pH Stresses on Saccharomyces cerevisiae as Monitored via Metabolites by Using Two Dimensional NMR Spectroscopy//NIH Public Access Author Manuscript. 2015. V. 34 (12). P. 3602-3608.
  • Selmecki A., Maruvka Y.E., Richmond P.A. et al. Polyploidy can drive rapid adaptation in yeast//Nature. 2015. V. 519. P. 349-352.
  • Storchova Z. Ploidy changes and genome stability in Yeast//Yeast. 2014. V. 31. № 14. P. 421-430.
  • Bardil A., Almeida J.D., Combes M.C., Lashermes P., Bertrand B. Genomic expression dominance in the natural allopolyploid Coffea arabica is massively affected by growth temperature//New Phytol. 2011. V. 192(3). P. 760-774.
  • Kevin P.S., Donald T.F. The expanding implications of polyploidy//JCB HOME. 2015. V. 209 (4). P. 485-491.
  • Scott A.L., Richmond P.A., Dowell R.D., Selmecki A.M. The Influence of Polyploidy on the Evolution of Yeast Grown in a Sub-Optimal Carbon Source//Mol Biol Evol. 2017. V. 34 (10). P. 2690-2703.
  • Petrov D.A. Evolution of genome size: new approaches to an old problem//Trends Genet. 2001. V. 17 (1). P. 23-28.
  • Zhang K., Fang Y.H., Gao K.H. et al. Effects of genome duplication on phenotypes and industrial applications of Saccharomyces cerevisiae strains//Appl Microbiol Biotechnol. 2017. V. 101 (13). P. 5405-5414.
  • Абрамов Ш.А., Котенко С.Ц., Халилова Э.А. Способ получения сушеных дрожжей//Патент РФ № 2151795. 2000. Б.И. № 18.
  • Халилова Э.А., Котенко С.Ц., Исламмагомедова Э.А., Аливердиева Д.А. «Способ получения этанола»//Патент РФ № 2495936. 2013. Б.И. № 29.
  • Аливердиева Д.А. Сравнительные изучение некоторых параметров энергетического обмена двух штаммов Saccharomyces cerevisiаe//Прикл. биохимия и микробиология. 2001. Т. 37. № 1. С. 90-96.
  • Khalilova E.A., Kotenko S.Ts., Islammagomedova E.A. et. al. Carboxylic Acids of Saccaromyces cerevisiae Grown in Different Culture Media//International Journal of Research Studies in Science, Engineering and Technology. 2015. V. 2. № 8. P. 62-70.
  • Абрамов Ш.А., Котенко С.Ц., Далгатова Б.И., Маммаев А.Т., Пейсахова Д.С./А.с СССЗ № 1284998. Штамм дрожжей Saccharomyces cerevisiae Y-503, используемый в производстве хлебобулочных изделий//Б.И. 1987. № 3. С. 104.
  • Аливердиева Д.А., Мамаев Д.В., Лагутина Л.С. Транспорт сукцината в клетки Saccharomyces cerevisiae после продолжительной холодовой преинкубации//Прикладная биохимия и микробиология. 2009. Т. 45. № 5. С. 485-577.
  • Аливердиева Д.A. Мамаев Д.В., Лагутина Л.С. Ocобенности изменения содержания субстратов эндогенного дыхания в клетках Saccharomyces cerevisiae при низкой температуре//Биохимия. 2006. Т. 71. № 1. С. 50-58.
  • Халилова Э.А., Абрамов Ш.А., Котенко С.Ц. Исламмагомедова Э.А. Влияние стимулятора биосинтеза этанола -геотермальной воды на морфофизиологические особенности дрожжей Saccharomyсes cerevisiae в различных условиях культивирования//Хранение и переработка сельхозсырья. 2010. № 8. С. 44-46.
  • Абрамов Ш.А., Котенко С.Ц., Аливердиева Д.А. Морфологические и биохимические свойства нового штамма S. cerevisiae У-503//Прикл. биохимия и микробиология. 1997. Т. 33. № 3. С. 325-328.
  • Абрамов Ш.А., Котенко С.Ц., Халилова Э.А. и др. Геотермальная вода в составе питательной среды и морфофизиологические свойства дрожжей S. cerevisiae//Прикл. биохимия и микробиология. 1999. Т. 35. № 3. С. 349-352.
  • Халилова Э.А., Абрамов Ш.А. Влияние питательных сред на состав свободных аминокислот дрожжей Sаccharomyces cerevisiae//Прикл. биохимия и микробиология. 2001. Т. 37. № 5. С. 578-580.
  • Hellweger F.L., Fredrick N.D., Berges J.A. Age-correlated stress resistance improves fitness of yeast: support from agent-based simulations//BMC Systems Biology. 2014. P. 8-18.
  • Хмеленина В.Н., Калюжная М.Г., Троценко Ю.А. Физиолого-биохимические особенности галоалкалотолерантного метанотрофа//Микробиология. 1997. Т. 66. № 4. С. 437-443.
  • Hohmann S. Osmotic adaptation in yeast-control of the yeast osmolyte system//Int Rev Cytol. 2002. № 215. P. 149-187.
  • Hohmann S. Osmotic stress signaling and osmoadaptation in yeasts//Microbiol Mol Biol Rev. 2002. V. 66 (2). P. 300-372.
  • Kai-Hui L., Xiao-Wei D., Manik Prabhu N. R. et al. Morphological and Transcriptomic Analysis Reveals the Osmoadaptive Response of Endophytic Fungus Aspergillus montevidensis ZYD4 to High Salt Stress//Front Microbiol. 2017. V. 8. P. 1789-1801.
  • Coelho M., Dereli A., Haese A., Kühn S. et. al. Fission Yeast Does Not Age under Favorable Conditions, but Does So after Stress//Current Biology. 2013. V. 23 (19). P. 1844-1852.
  • Granek J.A., Magwene P.M. Environmental and genetic determinants of colony morphology in yeast//PloS Genetics. 2010. P. 1-12.
  • Gallardo K., Candia J.E., Remonsellez F., Escudero L.V., Demergasso C.S. The ecological coherence of temperature and salinity tolerance and pigmentation in a non-marine Vibrio isolated from salar de Atacama//Front Microbiology. 2016. V. 7. P. 1-10.
  • Liu G.Y., Nizet V. Color me bad: microbial pigments as virulence factors//Trends Microbiol. 2009. V. 7(9). P. 406-413.
Еще
Статья научная