Изучение генетического разнообразия домашних и диких популяций северного оленя (Rangifer tarandus L., 1758) с использованием маркеров ядерного и митохондриального геномов

Автор: Кошкина О.А., Соловьева А.Д., Денискова Т.Е., Харзинова В.Р., Зиновьева Н.А.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Генетика, геномика, генетическая инженерия

Статья в выпуске: 6 т.57, 2022 года.

Бесплатный доступ

Енных воздействий он может оказаться под угрозой исчезновения, поэтому изучение и сохранение генетического разнообразия северного оленя остается актуальной задачей. В представленной работе мы впервые дали характеристику генетического разнообразия северных оленей, обитающих на территории Российской Федерации, выявили филогенетические связи и дали оценку степени дифференциации исследованных животных с использованием комплексного молекулярно-генетического подхода, который заключался в анализе ядерного и митохондриального геномов. Нашей целью была оценка генетического разнообразия, генетической структуры и филогенетических взаимоотношений домашних и диких популяций северного оленя, разводимых на территории Российской Федерации, на основе полных последовательностей гена CytB митохондриальной ДНК и полиморфизма локусов микросателлитов. Исследования проводили в 2022 году. Материалом служили срезы с рогов северного оленя. Выборка включала диких северных оленей тундровой популяции (WLD), домашних оленей ненецкой (NEN), чукотской (CHU), эвенской (EVN) пород, а также красноярской (EVK_KRA) и якутской (EVK_YAK) популяций эвенкийской породы. Для исследования мтДНК были отобраны 123 неродственные особи. Микросателлитный анализ проводили у 213 особей домашних пород и 119 представителей дикой популяции. Полные последовательности гена CytB определяли с использованием NGS (next generation sequencing) технологии (секвенатор miSeq, «Illumina, Inc.», США). Полиморфизм 9 STR (short tandem repeat) локусов (NVHRT21, NVHRT24, NVHRT76, RT1, RT6, RT7, RT9, RT27, RT30) определяли с помощью фрагментного анализа (генетический анализатор ABI3130xl, «Applied Biosystems», США). Для оценки генетического разнообразия каждой группы северных оленей рассчитывали показатели митохондриальной (число полиморфных сайтов S, среднее число нуклеотидных различий K, число гаплотипов H, гаплотипическое разнообразие HD, нуклеотидное разнообразие p) и микросателлитной (аллельное разнообразие, вычисленное с применением процедуры рарификации AR, наблюдаемая HO и несмещенная ожидаемая uHE гетерозиготность, несмещенный коэффициент инбридинга FIS) изменчивости. Степень генетической дифференциации групп оценивали на основании попарных значений FST и JostD . Статистическую обработку данных выполняли с использованием программ MEGA 7.0.26, PopART 1.7, PartitionFinder 2, Arlequin 3.5.2.2, MrBayes 3.2.7, FigTree 1.4.3, DnaSP 6.12.01, SplitsTree 4.14.5, STRUCTURE 2.3.4 и R пакетов diveRsity, pophelper, аdegenet и ggplot2. Анализ последовательностей гена CytB мтДНК показал, что все популяции характеризовались высоким гаплотипическим HD = 0,519 (CHU)-0,997 (WLD) и нуклеотидным разнообразием p = 0,00238 (CHU)-0,00626 (WLD). По мтДНК обособленной генетической структуры исследуемых популяций северного оленя мы не выявили. При анализе микросателлитной изменчивости значения аллельного разнообразия находились в пределах от 6,188 у CHU до 8,76 у WLD. Во всех шести популяциях наблюдаемая гетерозиготность варьировала от 0,566 (CHU) до 0,687 (EVK_YAK) и 0,693 (WLD). Все группы северного оленя характеризовались дефицитом гетерозигот, на что указывали положительные значения индекса фиксации FIS = 0,11 (EVK_YAK)-0,262 (EVK_KRA). Анализ структуры генетической сети показал дифференциацию чукотской породы от остальных, о чем свидетельствуют наивысшие показатели индекса FST и критерия JostD - от 0,203 и 0,488 у EVK_KRA до 0,212 и 0,564 у EVN. Как по ядерным, так и по митохондриальным маркерам популяция диких оленей отличалась от одомашненных популяций более высоким генетическим разнообразием. Можно предположить, что так или иначе селекционная работа с домашними породами северного оленя привела к созданию уникальных массивов животных, отличающихся от исходных диких сородичей. Тем не менее как домашняя, так и дикая популяции характеризовались высокой генетической изменчивостью.

Еще

Rangifer tarandus, северный олень, генетическое разнообразие, филогенетическая оценка, митохондриальная днк, микросателлитные локусы

Короткий адрес: https://sciup.org/142237379

IDR: 142237379   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2022.6.1101rus

Список литературы Изучение генетического разнообразия домашних и диких популяций северного оленя (Rangifer tarandus L., 1758) с использованием маркеров ядерного и митохондриального геномов

  • Kvie K.S., Heggenes J., Anderson D.G., Kholodova M.V., Sipko T., Mizin I., Røed K.H. Colo-nizing the high arctic: mitochondrial DNA reveals common origin of Eurasian archipelagic reindeer (Rangifer tarandus). PLoS ONE, 2016, 11(11): e0165237 (doi: 10.1371/journal.pone.0165237).
  • Røed K.H., Flagstad Ø., Nieminen M., Holand Ø., Dwyer M.J., Røv N., Vilà C. Genetic analyses reveal independent domestication origins of Eurasian reindeer. Proc. R. Soc. B., 2008, 275(1645): 1849-1855 (doi: 10.1098/rspb.2008.0332).
  • Baskin L.M. Number of wild and domestic reindeer in Russia in the late 20th century. Rangifer; 2005, 25(1): 51-57 (doi: 10.7557/2.25.1.337).
  • Banfield A.W.F. A revision of the reindeer and caribou genus Rangifer. Ottawa, National Museums of Canada, 1961.
  • Kvie K.S., Heggenes J., Røed K.H. Merging and comparing three mitochondrial markers for phylogenetic studies of Eurasian reindeer (Rangifer tarandus). Ecology and Evolution, 2016, 6(13): 4347-4358 (doi: 10.1002/ece3.2199).
  • Dmitriev N.G., Ernst L.K. Animal genetic resources of the USSR. Rome, FAO, 1989.
  • Conner J.K., Hartl D.L. A primer of ecological genetics. Sinauer Associates, Inc., Sunderland, MA, 2004.
  • Abdelmanova A.S., Dotsev A.V., Sermyagin A.A., Brem G.G., Zinovieva N.A. Assessment of the genetic resources of Russian local cattle breeds by genome-wide SNP analysis. Journal of Animal Science, 2021, 99(S3): 225 (doi: 10.1093/jas/skab235.410).
  • Денискова Т.Е., Селионова М.И., Гладырь Е.А., Доцев А.В., Бобрышова Г.Т., Костю-нина О.В., Брем Г., Зиновьева Н.А. Изменчивость микросателлитов в породах овец, разводимых в России. Сельскохозяйственная биология, 2016, 51(6): 801-810 (doi: 10.15389/agrobiology.2016.6.801rus).
  • Кошкина О.А., Денискова Т.Е., Доцев А.В., Kunz E., Upadhyay M., Krebs S., Соловь-ева А.Д., Medugorac I., Зиновьева Н.А. Оценка материнской изменчивости российских локальных пород овец на основе анализа полиморфизма гена цитохрома B. Сельскохозяй-ственная биология, 2021, 56(6): 1134-1147 (doi: 10.15389/agrobiology.2021.6.1134rus).
  • Barbanera F., Guerrini M., Beccani C., Forcina G., Anayiotos P., Panayides P. Conservation of endemic and threatened wildlife: molecular forensic DNA against poaching of the Cypriot mouf-lon (Ovis orientalis ophion, Bovidae). Forensic Science International: Genetics, 2012, 6(5): 671-675 (doi: 10.1016/j.fsigen.2011.12.001).
  • Rodionov A., Deniskova T., Dotsev A., Volkova V., Petrov S., Kharzinova V., Koshkina O., Abdelmanova A., Solovieva A., Shakhin A., Bardukov N., Zinovieva N. Combination of multiple microsatellite analysis and genome-wide SNP genotyping helps to solve wildlife crime: a case study of poaching of a Caucasian tur (Capra caucasica) in Russian Mountain National Park. Animals, 2021, 11(12): 3416 (doi: 10.3390/ani11123416).
  • Zhai J.-C., Liu W.-S., Yin Y.-J., Xia Y.-L., Li H.-P. Analysis on genetic diversity of reindeer (Rangifer tarandus) in the Greater Khingan Mountains using microsatellite markers. Zoological Studies, 2017, 56: e11 (doi: 10.6620/ZS.2017.56-11).
  • Денискова Т.Е., Харзинова В.Р., Доцев А.В., Соловьева А.Д., Романенко Т.М., Южа-ков, А.А., Лайшев К.А., Брем Г., Зиновьева Н.А. Генетическая характеристика региональ-ных популяций ненецкой породы северного оленя (Rangifer tarandus). Сельскохозяйствен-ная биология, 2018, 53(6): 1152-1161 (doi: 10.15389/agrobiology.2018.6.1152rus).
  • Kharzinova V.R., Dotsev A.V., Solovieva A.D., Fedorov V.I., Shimit L.D.O., Romanenko T.M., Senchik A.V., Sergeeva O.K., Goncharov V.V., Laishev K.A., Yuzhakov A.A., Brem G.G., Zi-novieva N.A. Genetic variability of Russian domestic reindeer populations (Rangifer tarandus) by mi-crosatellites. Journal of Animal Science, 2020, 98(4): 237-238 (doi: 10.1093/jas/skaa278.435).
  • Столповский Ю., Бабаян О., Kashtanov S., Piskunov A., Сёмина М., Kholodova M., Лайшев К., Южаков А., Романенко Т., Лисичкина М., Дмитриева Т., Етылина О., Прокудин А., Свищёва Г. Генетическая оценка пород северного оленя (Rangifer tarandus) и их дикого предка с помощью новой панели STR-маркеров. Генетика, 2020, 56(12): 1410-1426 (doi: 10.31857/S0016675820120139).
  • Kharzinova V.R., Dotsev A.V., Deniskova T.E., Solovieva A.D., Fedorov V.I., Layshev K.A., Romanenko T.M., Okhlopkov I.M., Wimmers K., Reyer H., Brem G., Zinovieva N.A. Genetic diversity and population structure of domestic and wild reindeer (Rangifer tarandus L. 1758): a novel approach using BovineHD BeadChip. PLoS ONE, 2018, 13(11): e0207944 (doi: 10.1371/journal.pone.0207944).
  • Gissi C., Iannelli F., Pesole G. Evolution of the mitochondrial genome of Metazoa as exemplified by comparison of congeneric species. Heredity, 2008, 101(4): 301-320 (doi: 10.1038/hdy.2008.62).
  • Wilkerson C.D., Mahoney S.P., Carr S.M. Post-glacial recolonization of insular Newfoundland across the Strait of Belle Isle gave rise to an endemic subspecies of woodland caribou, Rangifer tarandus terranovae (Bangs, 1896): evidence from mtDNA haplotypes. Genome, 2018, 61(8): 575-585 (doi: 10.1139/gen-2017-0199).
  • Cronin M.A., Macneil M.D., Patton J.C. Variation in mitochondrial DNA and microsatellite DNA in caribou (Rangifer Tarandus) in North America. Journal of Mammalogy, 2005, 86(3): 495-505 (doi: 10.1644/1545-1542(2005)86[495:VIMDAM]2.0.CO;2).
  • Cronin M.A., Macneil M.D., Patton J.C. Mitochondrial DNA and microsatellite DNA variation in domestic reindeer (Rangifer tarandus tarandus) and relationships with wild caribou (Rangifer tarandus granti, Rangifer tarandus groenlandicus, and Rangifer tarandus caribou). The Journal of heredity, 2006, 97(5): 525-530 (doi: 10.1093/jhered/esl012).
  • Ju Y., Liu H., Rong M., Zhang R., Dong Y., Zhou Y., Xing X. Genetic diversity and population genetic structure of the only population of Aoluguya Reindeer (Rangifer tarandus) in China. Mi-tochondrial DNA Part A, 2019, 30(1): 24-29 (doi: 10.1080/24701394.2018.1448081).
  • Edgar R.C. MUSCLE: multiple sequence alignment with high accuracy and high throughput. Nucleic Acids Research, 2004, 32(5): 1792-1797 (doi: 10.1093/nar/gkh340).
  • Kumar S., Stecher G., Tamura K. MEGA7: Molecular evolutionary genetics analysis version 7.0 for bigger datasets. Molecular Biology and Evolution, 2016, 33(7): 1870-1874 (doi: 10.1093/mol-bev/msw054).
  • Leigh J.W., Bryant D. Popart: Full-feature software for haplotype network construction. Methods in Ecology and Evolution, 2015, 6(9): 1110-1116 (doi: 10.1111/2041-210X.12410).
  • Lanfear R., Frandsen P.B., Wright A.M., Senfeld T., Calcott B. PartitionFinder 2: New methods for selecting partitioned models of evolution for molecular and morphological phylogenetic anal-yses. Molecular Biology and Evolution, 2017, 34(3): 772-773 (doi: 10.1093/molbev/msw260).
  • Akaike H. A new look at the statistical model identification. IEEE Transactions on Automatic Control, 1974, 19(6): 716-723 (doi: 10.1109/TAC.1974.1100705).
  • Excoffier L., Lischer H.E. Arlequin suite ver 3.5: a new series of programs to perform population genetics analyses under Linux and Windows. Molecular Ecology Resources, 2010, 10(3): 564-567 (doi: 10.1111/j.1755-0998.2010.02847.x).
  • Ronquist F., Teslenko M., van der Mark P., Ayres D.L., Darling A., Höhna S., Larget B., Liu L., Suchard M.A., Huelsenbeck J.P. MrBayes 3.2: efficient Bayesian phylogenetic inference and model choice across a large model space. Systematic Biology, 2012, 61(3): 539-542 (doi: 10.1093/sysbio/sys029).
  • Molecular evolution, phylogenetics and epidemiology. Режим доступа: http://tree.bio.ed.ac.uk/soft-ware/figtree. Дата обращения: 30.06.2022.
  • Rozas J., Ferrer-Mata A., Sánchez-DelBarrio J.C., Guirao-Rico S., Librado P., Ramos-On-sins S.E., Sánchez-Gracia A. DnaSP 6: DNA sequence polymorphism analysis of large data sets. Molecular Biology and Evolution, 2017, 34(12): 3299-3302 (doi: 10.1093/molbev/msx248).
  • Kharzinova V.R., Gladyr’ E.A., Fedorov V.I., Romanenko T.M., Shimit L.D., Layshev K.A., Kalashnikova L.A., Zinovieva N.A. Development of multiplex microsatellite panel to assess the parentage verification in and differentiation degree of reindeer populations (Rangifer tarandus). Agricultural Biology, 2015, 50(6): 756-765 (doi: 10.15389/agrobiology.2015.6.756eng).
  • Keenan K., McGinnity P., Cross T.F., Crozier W.W., Prodöhl P.A. diveRsity: An R package for the estimation and exploration of population genetics parameters and their associated errors. Methods in Ecology and Evolution, 2013, 4(8): 782-788 (doi: 10.1111/2041-210X.12067).
  • Weir B.S., Cockerham C.C. Estimating F-statistics for the analysis of population structure. Evo-lution, 1984, 38(6): 1358-1370 (doi: 10.1111/j.1558-5646.1984.tb05657.x).
  • Jost L. GST and its relatives do not measure differentiation. Molecular Ecology, 2008, 17(18): 4015-4026 (doi: 10.1111/j.1365-294X.2008.03887.x).
  • Huson D.H., Bryant D. Application of phylogenetic networks in evolutionary studies. Molecular Biology and Evolution, 2006, 23(2): 254-267 (doi: 10.1093/molbev/msj030).
  • Jombart T. adegenet: a R package for the multivariate analysis of genetic markers. Bioinformatics, 2008, 24(11): 1403-1405 (doi: 10.1093/bioinformatics/btn129).
  • Wickham H. ggplot2: Elegant graphics for data analysis. Springer-Verlag, NY, 2009.
  • Pritchard J.K. Stephens M., Donnelly P. Inference of population structure using multilocus gen-otype data. Genetics, 2000, 155(2): 945-959 (doi: 10.1093/genetics/155.2.945).
  • Earl D.A., von Holdt B.M. Structure Harvester: A website and program for visualizing Structure output and implementing the Evanno method. Conservation Genetics Resources, 2012, 4: 359-361 (doi: 10.1007/s12686-011-9548-7).
  • Evanno G., Regnaut S., Goudet J. Detecting the number of clusters of individuals using the software STRUCTURE: A simulation study. Molecular Ecology, 2005, 14(8): 2611-2620 (doi: 10.1111/j.1365-294X.2005.02553.x).
  • R Core Team. R: A language and environment for statistical computing. R Foundation for statistical computing. Vienna, Austria, 2012. Режим доступа: https://www.semanticscholar.org/paper/R%3A-A-language-and-environment-for-statistical-Team/659408b243cec55de8d0a3bc51b81173007aa89b. Без даты.
Еще
Статья научная