Изучение биологических свойств изолята вируса африканской чумы свиней ASFV/Kaliningrad 17/WB-13869

Автор: Шотин А.Р., Иголкин А.С., Мазлум А., Шевченко И.В., Аронова Е.В., Груздев К.Н.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Ветеринария, ветеринарная вирусология

Статья в выпуске: 4 т.58, 2023 года.

Бесплатный доступ

Африканская чума свиней (АЧС) - контагиозная вирусная болезнь домашних свиней и диких кабанов всех возрастов и пород. К настоящему времени инфекция широко распространена во многих странах Европы и Азии, включая Российскую Федерацию. Ранее выделенные изоляты возбудителя АЧС были охарактеризованы отечественными учеными как высоковирулентные, обладающие 100 % летальностью для восприимчивых животных и отнесены ко II генотипу. Однако существуют данные об обнаружении изолятов со сниженной вирулентностью и летальностью, что требует дальнейшего изучения разнообразия биологических свойств современных вариантов вируса АЧС. В настоящей работе впервые установлены биологические свойства изолята вируса АЧС, циркулирующего на территории Калининградской области Российской Федерации. Нашей целью было изучение изолята вируса АЧС ASFV/Kaliningrad 17/WB-13869. Постановку биологической пробы осуществляли на 6 свиньях ( Sus scrofa domesticus L.) крупной белой породы массой 15-20 кг. Животные содержались в условиях виварного комплекса Федерального центра охраны здоровья животных (ФГБУ ВНИИЗЖ). Свиней №№ 3-6 заражали культуральным материалом, содержащим гемадсорбирующий вирус АЧС II генотипа 8 серотипа (изолят ASFV/Kaliningrad 17/WB-13869), выделенный из трубчатой кости павшего дикого кабана (Калининградская обл., Багратионовский р-н) (штамм АЧС/Калининград-10/17, получен ФГБУ ВНИИЗЖ). Вирусосодержащую суспензию вводили внутримышечно в дозе 10 ГАдЕ/гол. Две незараженных свиньи (№№ 1, 2) содержались совместно с инфицированными. Ежесуточно осуществляли визуальный контроль клинических признаков болезни и измеряли ректально температуру тела каждой свиньи. Наличие и тяжесть клинических признаков и патологоанатомических изменений выражали количественно (сумма баллов по ряду показателей). Оценивали температуру тела, упитанность, поведение, аппетит и потребление воды, состояние пищеварительной и респираторной систем, кожных покровов и слизистых оболочек, наличие назальных выделений и рвоты, показатели инкубационного периода. При патологоанатомическом вскрытии оценивали изменения селезенки, почек, печени, легкого, подчелюстных и брыжеечных лимфатических узлов. Баллы присваивали по шкале тяжести регистрируемых признаков от 1 до 3 (самая тяжелая). Отбор проб крови (5,0 см3 от каждого животного) проводили до момента гибели свиней на 0-е, 3-и, 6-е 10-е, 13-е и 19-е сут после начала эксперимента. Образцы крови разделяли на пробы сгустка и сыворотки. В день регистрации гибели экспериментальных животных проводили их патологоанатомическое вскрытие и отбирали по 6 проб органов от каждой павшей свиньи (по одному образцу селезенки, почек, печени, легкого, подчелюстных и брыжеечных лимфатических узлов). Из образцов сгустков крови и органов готовили 10 % суспензии на стерильном физиологическом растворе с помощью автоматического гомогенизатора, затем центрифугировали при 400 g («Sigma Laborzentrifugen GmbH», Германия) в течение 2 мин. Полученную надосадочную жидкость использовали для экстракции ДНК. Пробы сыворотки крови оценивали на наличие специфических антител к вирусу АЧС с использованием тест-систем для постановки иммуноферментного анализа INgezim PPA Compac («Ingenasa», Испания) и ID Screen, African Swine Fever Indirect, Screening Test («IDvet», Франция), а также с помощью иммунопероксидазного метода (ИПМ). При проведении ПЦР-РВ геном вируса АЧС регистрировали, начиная с 3-х сут после заражения. При использовании ИПМ специфические антитела к вирусу были АЧС обнаружены за 1-2 сут до гибели инфицированных животных. При исследовании проб сыворотки с помощью тест-систем на основе ТФ-ИФА были получены отрицательные результаты. Максимальной суммой баллов при оценке клинических признаков и патологоанатомических изменений характеризовались животных с подострой формой течения болезни (соответственно 21 и 35 баллов), минимальной - со сверхострой (6 и 8 баллов). В результате выполненной работы изолят вируса АЧС ASFV/Kaliningrad 17/WB-13869 был охарактеризован как высоковирулентный, способный вызывать АЧС у свиней в формах от сверхострой до подострой с гибелью до 100 % зараженных и контактных животных, что сходно с клинической картиной, характерной для изолятов вируса АЧС, выделенных на территории РФ в 2007-2018 годах и обладавших 100 % летальностью для свиней. Несмотря на полученные данные, существует вероятность выживания части животных, зараженных в том числе высоковирулентными изолятами вируса АЧС, а также возможность изменения биологических свойств уже циркулирующих вариантов возбудителя. Для выявление вируса АЧС и/или его генома и специфических антител к возбудителю инфекции требуется сочетание прямых (ПЦР-РВ, вирусовыделение) и косвенных (ТФ-ИФА, ИМП) методов исследования.

Еще

Африканская чума свиней, дикие кабаны, биологическая проба, лабораторная диагностика, клинические признаки, патологоанатомические изменения

Короткий адрес: https://sciup.org/142239851

IDR: 142239851   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2023.4.773rus

Список литературы Изучение биологических свойств изолята вируса африканской чумы свиней ASFV/Kaliningrad 17/WB-13869

  • Gabriel C., Blome S., Malogolovkin, A., Parilov S., Kolbasov D., Teifke J.P., Beer M. Charac-terization of African swine fever virus Caucasus isolate in European wild boars. Emerging Infectious Diseases, 2011, 17(12): 2342-2345 (doi: 10.3201/eid1712.110430).
  • Guinat C., Reis A.L., Netherton C.L., Goatley L., Pfeiffer D.U., Dixon L. Dynamics of African swine fever virus shedding and excretion in domestic pigs infected by intramuscular inoculation and contact transmission. Veterinary Research, 2014, 45(1): 93 (doi: 10.1186/s13567-014-0093-8).
  • Blome S., Gabriel C., Dietze K., Breithaupt A., Beer M. High virulence of African swine fever virus caucasus isolate in European wild boars of all ages. Emerging Infectious Diseases, 2012, 18(4): 708 (doi: 10.3201/eid1804.111813).
  • Events management. WAHIS. Режим доступа: https://wahis.woah.org/#/event-management. Дата обращения: 21.03.2022.
  • Dixon L.K., Chapman D.A.G., Netherton C.L., Upton C. African swine fever virus replication and genomics. Virus Research, 2013, 173(1): 3-14 (doi: 10.1016/j.virusres.2012.10.020).
  • Мазлум А., Иголкин А.С., Власова Н.Н., Роменская Д.В. Вирус африканской чумы свиней: использование генетических маркеров при анализе путей его распространения. Ветеринария сегодня, 2019, 3: 3-14 (doi: 10.29326/2304-196X-2019-3-30-3-8).
  • Груздев К.Н., Караулов А.К., Иголкин А.С. Опыт борьбы с африканской чумой свиней в Российской Федерации и его значение для других стран. Ветеринария сегодня, 2020, 1: 38-43 (doi: 10.29326/2304-196X-2020-1-32-38-43).
  • Alonso C., Borca M., Dixon L., Revilla Y., Rodriguez F., Escribano J.M. ICTV Virus Taxonomy Profile: Asfarviridae. The Journal of General Virology, 2018, 99(5): 613-614 (doi: 10.1099/jgv.0.001049).
  • Ремыга С.Г., Першин А.С., Шевченко И.В., Иголкин А.С., Шевцов А.А. Клинические и патологоанатомические изменения у диких европейских кабанов и домашних свиней при заражении вирусом африканской чумы свиней. Ветеринария сегодня, 2016, 3(18): 46-51.
  • Власов М.Е., Сибгатуллова А.К., Балышев В.М. Особенности течения африканской чумы у свиней, инфицированных изолятами вируса АЧС, выделенными в Российской Федерации. Ветеринария, 2019, 4: 15-19 (doi: 10.30896/0042-4846.2019.22.4.15-19).
  • Болгова М.В., Моргунов Ю.П., Васильев А.П., Балышев В.М. Биологические свойства изолятов вируса африканской чумы свиней, выделенных в Российской Федерации в 2012 г. Актуальные вопросы ветеринарной биологии, 2013, 4(20): 26-30.
  • Балышев В.М, Куриннов В.В., Цыбанов С.Ж., Калантаенко Ю.Ф., Колбасов Д.В., Пронин В.В., Корнева Г.В. Биологические свойства вируса африканской чумы свиней, выде-ленного в Российской Федерации. Ветеринария, 2010, 7: 25-27.
  • Pershin A., Shevchenko I., Igolkin A., Zhukov I., Mazloum A., Aronova E., Vlasova N., Shev-tsov A. A long-term study of the biological properties of ASF virus isolates originating from various regions of the Russian Federation in 2013-2018. Vet. Sci., 2019, 6(4): 99 (doi: 10.3390/vetsci6040099).
  • Варенцова А.А., Ремыга С.Г., Гаврилова В.Л., Жуков И.Ю., Пузанкова О.С., Власова Н.Н., Шевцов А.А., Груздев К.Н. Сравнительный анализ изолятов вируса африканской чумы свиней. Ветеринария, 2013, 12: 27-32.
  • Черных Ю.А., Кривонос Р.А., Верховский О.А., Алипер Т.И., Першин А.С., Жуков И.Ю., Власова Н.Н., Иголкин А.С. Молекулярно-биологические свойства изолята Тимашевск 01/18. Ветеринарный врач, 2019, 2: 15-22 (doi: 10.33632/1998-698X.2019-2-15-22).
  • Zhao D., Liu R., Zhang X., Li F., Wang J., Zhang J., Liu X., Wang L., Zhang J., Wu X., Guan Y., Chen W., Wang X., He X., Bu Z. Replication and virulence in pigs of the first African swine fever virus isolated in China. Emerging Microbes & Infections, 2019, 8(1): 438-447 (doi: 10.1080/22221751.2019.1590128).
  • Gallardo C., Soler A., Nurmoja I., Cano-Gómez C., Cvetkova S., Frant M., Woźniakowski G., Simón A., Pérez C., Nieto R., Arias M. Dynamics of African swine fever virus (ASFV) infection in domestic pigs infected with virulent, moderate virulent and attenuated genotype II ASFV European isolates. Transboundary and Emerging Diseases, 2021, 68(5): 2826-2841 (doi: 10.1111/tbed.14222).
  • Zani L., Forth J. H., Forth L., Nurmoja I., Leidenberger S., Henke J., Carlson J., Brei-denstein C., Viltrop A., Höper D., Sauter-Louis C., Beer M., Blome S. Deletion at the 5'-end of Estonian ASFV strains associated with an attenuated phenotype. Scientific Reports, 2018, 8(1): 6510 (doi: 10.1038/s41598-018-24740-1).
  • Sun E., Zhang Z., Wang Z., He X., Zxang X., Wang L., Huang L., Xi F., Huangfu H., Tsegay G., Huo H., Sun J., Tian Z., Xia W., Yu X., Li F., Liu R., Guan Y., Zhao D., Bu Z. Emergence and prevalence of naturally occurring lower virulent African swine fever viruses in domestic pigs in China in 2020. Sci. China Life Sci., 2021, 64, 752-765 (doi: 10.1007/s11427-021-1904-4).
  • Gallardo C., Soler A., Nieto R., Sánchez M.A., Martins C., Pelayo V., Carrascosa A., Revilla Y., Simón A., Briones V., Sánchez-Vizcaíno J. M., Arias M. Experimental transmission of African swine fever (ASF) low virulent isolate NH/P68 by surviving pigs. Transboundary and Emerging Diseases, 2015, 62(6): 612-622 (doi: 10.1111/tbed.12431).
  • Gallardo C., Soler A., Nieto R., Cano C., Pelayo V., Sánchez M.A., Pridotkas G., Fernandez-Pinero J., Briones V., Arias M. Experimental infection of domestic pigs with African swine fever virus Lithuania 2014 genotype II field isolate. Transboundary and Emerging Diseases, 2017 64(1): 300-304 (doi: 10.1111/tbed.12346).
  • Шотин А.Р., Иголкин А.С., Мазлум А., Шевченко И.В., Бардина Н.С., Морозова Е.О., Шевцов А.А. Африканская чума свиней в Приморском крае: эпизоотическая ситуация и молекулярно-биологические свойства изолята, выделенного из трубчатой кости от дикого кабана. Ветеринария сегодня, 2022, 11(4): 347-358 (doi: 10.29326/2304-196X-2022-11-4-347-358).
  • Gallardo C., Soler A., Rodze I., Nieto R., Cano-Gómez C., Fernandez-Pinero J., Arias M. Attenuated and non-haemadsorbing (non-HAD) genotype II African swine fever virus (ASFV) isolated in Europe, Latvia 2017. Transboundary and Emerging Diseases, 2019, 66(3): 1399-1404 (doi: 10.1111/tbed.13132).
  • Sun E., Huang L., Zhang X., Zhang J., Shen D., Zhang Z., Wang Z., Huo H., Wang W., Huangfu H., Wang W., Li F., Liu R., Sun J., Tian Z., Xia W., Guan Y., He X., Zhu Y., Zxao D., Bu Z. Genotype I African swine fever viruses emerged in domestic pigs in China and caused chronic infection. Emerging Microbes & Infections, 2021, 10(1): 2183-2193 (doi: 10.1080/22221751.2021.1999779).
  • Nurmoja I, Petrov A., Breidenstein C., Zani L., Forth J.H., Beer M., Kristian M., Viltrop A., Blome S. Biological characterization of African swine fever virus genotype II strains from north-eastern Estonia in European wild boar. Transboundary and Emerging Diseases, 2017, 64(6): 2034-2041 (doi: 10.1111/tbed.12614).
  • Стрижакова О.М., Лыска В.М., Малоголовкин А.С., Новикова М.Б., Сидлик М.В., Но-гина И.В., Шкаев А.Э., Балашова Е.А., Куриннов В.В., Васильев А.П. Валидация ИФА-набора для обнаружения антител к вирусу африканской чумы свиней в крови и селезенке домашних свиней и диких кабанов. Сельскохозяйственная биология, 2016, 51(6): 845-852 (doi: 10.15389/agrobiology.2016.6.845rus).
  • Шевченко И.В., Жуков И.Ю., Першин А.С., Ремыга С.Г., Шевцов А.А., Иголкин А.С. Методические рекомендации по постановке биопробы с заражением свиней вирусом африканской чумы свиней. Владимир, 2017.
  • Методические указания по оценке клинических признаков и патологоанатомических изменений при экспериментальном заражении вирусом африканской чумы свиней. Владимир, 2017.
  • Kurinnov V., Belyanin S., Vasiliev A., Strizhackova O., Lyska V., Nogina I., Balyshev V., Tsyb-anov S., Mironova L., Chernuikh O., Kolbasov D. Detection of specific antibodies in the organs of dead domestic pigs and wild boars after an experimental acute ASF infection and at the infec-tion outbreaks in Russia in 2008 to 2011. EPIZONE 6th Annual Meeting «Viruses on the move». Brighton, 2012: 51.
  • Першин А.С., Комова Т.Н., Шотин А.Р., Жуков И.Ю., Власова Н.Н., Шевченко И.В., Иголкин А.С. Методические рекомендации по выявлению антител к вирусу африканской чумы свиней иммунопероксидазным методом. Владимир, 2020.
  • Чернышев Р.С., Мазлум А., Колбин И.С., Иголкин А.С. Методические рекомендации по определению числа копий генома вируса африканской чумы свиней в биологическом материале методом полимеразной цепной реакции в режиме реального времени (ПЦР-РВ). Владимир, 2022.
  • Власов М.Е. Клинические проявления болезни и патологоанатомические изменения у свиней, инфицированных изолятами вируса АЧС, выделенными от кабанов. Научный журнал КубГАУ, 2017, 134(10): 1-11 (doi: 10.21515/1990-4665-134-086).
  • Балышев В.М., Власов М.Е., Иматдинов А.Р., Титов И.А., Моргунов С.Ю., Малоголовкин А.С. Биологические свойства и молекулярно-генетическая характеристика вируса африканской чумы свиней, выделенного в 2016-2017 гг. в различных регионах Российской Федерации. Российская сельскохозяйственная наука, 2018, 4: 54-57 (doi: 10.31857/S250026270000536-4).
  • Vlasova N.N., Varentsova A.A., Shevchenko I.V., Zhukov I.Y., Remyga S.G., Gavrilova V.L., Puzankova O.S., Shevtsov A.A., Zinyakov N.G., Gruzdev K.N. Comparative analysis of clinical and biological characteristics of African swine fever virus isolates from 2013 year Russian Federation. British Microbiology Research Journal, 2015, 5(3): 203-215 (doi: 10.9734/BMRJ/2015/12941).
  • Gallardo C., Fernández-Pinero J., Arias M. African swine fever (ASF) diagnosis, an essential tool in the epidemiological investigation. Virus Research, 2019, 271: 197676 (doi: 10.1016/j.vi-rusres.2019.197676).
  • Gallardo M.C., de la Torre Reoyo A., Fernández-Pinero J., Iglesias I., Muñoz M.J., Arias M.L. African swine fever: a global view of the current challenge. Porcine Health Management, 2015, 1: 21 (doi: 10.1186/s40813-015-0013-y).
  • Mur L., Igolkin A., Varentsova A., Pershin A., Remyga S., Shevchenko I., Zhukov I., Sánchez-Vizcaíno J.M. Detection of African swine fever antibodies in experimental and field samples from the Russian Federation: implications for control. Transboundary and Emerging Diseases, 2016, 63(5): e436-e440 (doi: 10.1111/tbed.12304).
  • Global African Swine Fever Research Alliance (GARA) Gap Analysis Report. 2018. Режим доступа: https://go.usa.gov/xPfWr. Дата обращения: 18.07.2021.
Еще
Статья научная