Гистологическое строение проксимального метафизарного хряща плечевой кости у крыс после шестидесятидневного введения тартразина

Автор: Лузин Владислав Игоревич, Фастова Ольга Николаевна, Морозов Виталий Николаевич, Морозова Елена Николаевна, Заболотная Светлана Владимировна

Журнал: Ульяновский медико-биологический журнал @medbio-ulsu

Рубрика: Физиология

Статья в выпуске: 1, 2020 года.

Бесплатный доступ

Цель исследования. Установить, оказывает ли влияние 60-дневное введение тартразина в дозах 750 и 1500 мг/кг массы тела на гистологическое строение проксимального метафизарного хряща плечевой кости у половозрелых крыс. Материалы и методы. Исследование проведено на 90 белых крысах-самцах, распределенных на 3 группы: 1-я - контрольная, в которой животные ежедневно в течение 60 дней получали физиологический раствор через желудочный зонд; 2-ю и 3-ю группы составили крысы, которые на протяжении 60 дней получали внутрижелудочно 1 мл раствора тартразина в дозах 750 и 1500 мг/кг массы тела соответственно. Сроки периода реадаптации после окончания введения тартразина составляли 3, 10, 15, 24, 45 сут. Проксимальный метафиз плечевой кости подвергался обработке по стандартному гистологическому протоколу. Полученные срезы окрашивались гематоксилин-эозином и подвергались последующему гистоморфометрическому исследованию. Результаты. У животных 2-й группы на 3-й день периода реадаптации общая ширина проксимального метафизарного хряща плечевой кости была меньше значений контрольной группы на 8,59 %, ширина зон индифферентного, пролиферирующего и дефинитивного хряща - на 6,11, 8,85 и 7,15 % меньше, ширина зоны деструкции - на 11,55 %, а ширина зоны остеогенеза - на 9,92 %. Содержание первичной спонгиозы в зоне остеогенеза и количество клеток на поверхности трабекул были меньше значений контрольной группы на 8,45 и 8,42 %. В ходе периода реадаптации сходная динамика изменений гистоморфометрических параметров метафизарного хряща плечевой кости сохранялась с тенденцией к сглаживанию к 45-м сут эксперимента. У крыс 3-й группы в ходе всего периода реадаптации изучаемые параметры изменялись более значимо и их восстановление до контрольных величин происходило медленнее, чем во 2-й группе. Выводы. 60-дневное введение тартразина половозрелым крысам сопровождается угнетением костеобразовательной функции проксимального метафизарного хряща плечевой кости, что подтверждается снижением ширины всех его зон и объемных компонентов зоны остеогенеза. Более выраженные по амплитуде и длительности изменения изучаемых параметров зафиксированы у животных, получавших тартразин в дозе 1500 мг/кг массы тела.

Еще

Плечевая кость, метафизарный хрящ, тартразин, гистоморфометрия

Короткий адрес: https://sciup.org/14117549

IDR: 14117549   |   DOI: 10.34014/2227-1848-2020-1-150-157

Список литературы Гистологическое строение проксимального метафизарного хряща плечевой кости у крыс после шестидесятидневного введения тартразина

  • Самусев Р.П., Зубарева Е.В., Рудаскова Е.С. Возрастная морфология. Часть I: учебное пособие. Волгоград; 2012. 176.
  • Burdan F., Szumiio J., Korobowicz A., Farooquee R., Patel S., Patel A., Dave A., Szumiio M., Solecki M., Klepacz R., Dudka J. Morphology and physiology of the epiphyseal growth plate. Folia Histochem. Cytobiol. 2009; 47 (1): 5-16.
  • Setiawati R., Rahardjo P. Bone Development and Growth. Osteogenesis and Bone Regeneration. URL: https://www.intechopen.com/books/osteogenesis-and-bone-regeneration/bone-development-and-growth (дата обращения: 11.11.2019). DOI: 10.5772/intechopen.82452
  • Ковешников В.Г., Абакаров М.Х., Лузин В.И. Скелетные ткани: хрящевая ткань, костная ткань. Луганск: Издательство Луганского госмедуниверситета; 2000. 154.
  • Mirtz T.A., Chandler J.P., Eyers C.M. The Effects of Physical Activity on the Epiphyseal Growth Plates: A Review of the Literature on Normal Physiology and Clinical Implications. Journal of Clinical Medicine Research. 2011; 3 (1): 1-7.
  • Inetianbor J.E., Yakubu J.M., Ezeonu S. C. Effects of food additives and preservatives on man - a review. Asian Journal of Science and Technology. 2015; 6 (02): 1118-1135.
  • Ventura-Camargo Bruna de Campos, Marin-Morales Maria Aparecida. Azo Dyes: Characterization and Toxicity - A Review. Textiles and Light Industrial Science and Technology (TLIST). 2013; 2 (2): 85-103.
  • Западнюк И.П., Западнюк В.И., Захария Е.А., Западнюк Б.В. Лабораторные животные. Разведение, содержание, использование в эксперименте. 3-е изд., перераб. и доп. Киев; 1983. 383 с.
  • Рыболовлев Ю.Р., Рыболовлев Р.С. Дозирование веществ для млекопитающих по константе биологической активности. Доклады АН СССР. 1979; 247 (6): 1513-1516.
  • European convention for the protection of vertebrate animals used for experimental and other scientific purpose: Council of Europe 18.03.1986. Strasbourg; 1986: 52.
  • Саркисов Д.С., Перов Д.С. Микроскопическая техника. Москва: Медицина; 1996. 544.
  • Реброва О.Ю. Статистический анализ медицинских данных. Применение пакета прикладных программ STATISTICA. М.: Медиа Сфера; 2002. 312.
  • El-Desoky G.E., Abdel-Ghaffar A., Al-Othman Z.A., Habila M.A. Curcumin protects against tartrazine-mediated oxidative stress and hepatotoxicity in male rats. European Review for Medical and Pharmacological Sciences. 2017; 21 (3): 635-645.
  • Yudoh K., Nguyen T., Nakamura H., Hongo-Masuko K., Kato T., Nishioka K. Potential involvement of oxidative stress in cartilage senescence and development of osteoarthritis: oxidative stress induces chondrocyte telomere instability and downregulation of chondrocyte function. Arthritis Res. Ther. 2005; 7 (2): R380-R391.
  • Brandl A., Hartmann A., Bechmann V., Graf B., Nerlich M., Angele P. Oxidative Stress Induces Senescence in Chondrocytes. Journal of Orthopaedic Research. 2011; 29 (7): 1114-1120.
  • Savasky B.M., Mascotti D.P., Patel N., Rodriguez-Collazo E. Nutritional and Pharmacological Effects on Oxidative Stress in Soft Tissue and Bone Remodeling. Journal of Nutrition and Metabolism. 2018; Article ID 4183407: 9.
  • Lean J.M., Jagger C.J., Kirstein B., Fuller K. Hydrogen peroxide is essential for estrogen deficiency bone loss and osteoclast formation. Endocrinology. 2005; 146 (2): 728-735.
  • Fontani F., Marcucci G., Iantomasi T., Brandi M.L. Glutathione, N-acetylcysteine and lipoic acid down-regulate starvation-induced apoptosis, RANKL/OPG ratio and sclerostin in osteocytes: involvement of JNK and ERK1/2 signalling. Calcified Tissue International. 2015; 96 (4): 335-346.
  • Kim J.H., Liu X., Wang J. Wnt signaling in bone formation and its therapeutic potential for bone diseases. Therapeutic Advances in Musculoskeletal Disease. 2013; 5 (1): 13-31.
Еще
Статья научная