Формирование биопленок уропатогенными штаммами Escherichia coli на различных абиотических поверхностях
Автор: Гизатуллина Ю.С., Кузнецова М.В.
Журнал: Вестник Пермского университета. Серия: Биология @vestnik-psu-bio
Рубрика: Микробиология
Статья в выпуске: 2, 2017 года.
Бесплатный доступ
Изучено формирование биопленок клиническими уропатогенными штаммами Escherichia coli (UPEC) на полистироле и абиотических поверхностях медицинского назначения - латексе, поливинилхлориде (ПВХ), силиконе. Биопленки были массивнее на полистироле, чем на катетерах из ПВХ (W-test: р=0.028) и силикона (р=0.027), но не латекса (р>0.05). Сформированные на поверхности урологических катетеров биопленки UPEC были массивнее на латексе (латекс vs ПВХ p=0.028; латекс vs силикон р=0.019). С увеличением гидрофильности атакованной поверхности, проанализированной по адсорбции нафталина, снижалась эффективность ее колонизации бактериями (латекс > полистирол > ПВХ > силикон). Выявленная сильная положительная связь между биомассой биопленки и гидрофобностью клеточной стенки на гидрофобных носителях (латекс: rs=0.675; полистирол: rs=0.713) уменьшалась на более гидрофильных поверхностях (ПВХ: rs=0.334; силикон: rs=0.371). Число бактерий UPEC в составе биопленки было различно на всех поверхностях, максимальное количество жизнеспособных клеток обнаружено на полистироле и силиконе. Показано, что самые массивные биопленки были сформированы на полистироле при концентрации глюкозы 3.5% и при pH 6.0 и 7.0.
Уропатогенная escherichia coli (upec), биопленка, полистирол, латекс, поливинилхлорид, силикон, гидрофобность
Короткий адрес: https://sciup.org/147204823
IDR: 147204823
Список литературы Формирование биопленок уропатогенными штаммами Escherichia coli на различных абиотических поверхностях
- Бондаренко В.М. и др. Генетические детерминанты патогенности Escherichia coli, изолированных из мочи и фекалий детей с различными клиническими вариантами инфекции мочевой системы//Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2004. № 4. С. 3-7
- Grabe M. et al. Инфекции мочевыводящих путей у пациентов с почечной недостаточностью, после трансплантации почки, с сахарным диабетом и иммуносупрессией. Рекомендации Европейской ассоциации урологов//Урология и нефрология. Избранные вопросы нефрологии. 2015. № 6. С. 4-14
- Гриценко В.А. и др. Анализ взаимосвязи серорези-стентности и физико-химических свойств эшери-хий с их способностью образовывать биопленки//Курский научно-практический вестник «Человек и его здоровье». 2012. № 1. С. 10-13
- Данилов В.С. и др. Сенсорные биолюминесцентные системы на основе lux-оперонов разных видов люминесцентных бактерий//Вестник МГУ. Биология. 2002. № 3. С. 20-24
- Зорина А. С., Максимова Ю. Г. Иммобилизованные нитрилгидролизующие бактерии для систем биофильтрации//Российский иммунологический журнал. 2015. Т. 9(18), № 2(1). С.733-735
- Карпова Е.П. В фокусе -биопленки!//Детская оториноларингология. 2013. № 1. C. 34-35
- Коган М.И. и др. Микробный спектр мочи при ко-ралловадном нефролитиазе//Саратовский научно-медицинский журнал. 2011. № 3. С. 717
- Коваленко Г.А. и др. Приготовление и исследование нанопористых углеродных носителей на катализаторе Ni/сибунит//Кинетика и катализ. 2009. Т. 50, № 4. С. 618-626
- Коробов В.П. и др. Анализ чувствительности процессов формирования биопленок Staphylococcus epi-dermidis 33 к некоторым факторам внешней среды//Вестник Пермского университета. Сер. Биология. 2010. Вып. 1(1). С. 59-63
- Немец Е.А. и др. Образование биопленок штаммами госпитальной флоры, выделенными из биологических субстратов пациентов, на поверхности материалов и изделий медицинского назначения//Вестник трансплантологии и искусственных органов. 2013. Т. 15, № 4. С. 92-97
- Николаев Ю.А. Регуляция адгезии у бактерий Pseudomonas fluorescens под влиянием дистантных межклеточных взаимодействий//Микробиология. 2000. Т. 69, № 3. С. 356-361
- Перепанова Т.С. и др. Мочевая инфекция и биопленки//Эффективная фармакотерапия. Урология и нефрология. 2013. № 4. С. 26-30
- Пинегина О.Н. и др. Видовой состав микроорганизмов, образование биопленок и колонизация центральных венозных и уретральных катетеров//Проблемы медицинской микологии. 2013. Т. 15, № 4. С. 81-85
- Плакунов В.К., Николаев Ю.А. Микробные биопленки: перспективы использования при очистке сточных вод//Вода: химия и экология. 2008. № 5. С. 11-13
- Сергевнин В.И., Ключарева Н.М. Факторы риска и профилактика внутрибольничных катетер-ассоциированных инфекций мочевыводящих путей//Заместитель главного врача. 2016. № 4 (119). С. 82-85
- Степанов А.А. и др. Сканирующая электронная микроскопия биопленок уретральных и венозных катетеров//Проблемы медицинской микологии. 2014. Т. 16, № 4. С. 32-37
- Abdallah И.М.А et al. Biofilm forming bacteria isolated from urinary tract infection, relation to catheterization and susceptibility to antibiotics//International Journal Biotechnology Molecular Biology Research. 2011. Vol. 2. Р. 172-178
- Adamus-Biaiek W. et al. Analysis of uropathogenic Escherichia coli biofilm formation under different growth conditions//Acta Biochimica Polonica. 2015. Vol. 62, № 4. Р. 765-771
- Ahearm D. G. et al. Effect of hydrogel/silver coating on in vitro adhesion to catheters of bacteria associated with urinary tract infections//Current Microbiology. 2000. Vol. 41. Р. 120-125
- Cerca N. et al. Quantitative analysis of adhesion and biofilm formation on hydrophilic and hydrophobic surfaces of clinical isolates of Staphylococcus epi-dermidis//Research in Microbiology. 2005. Vol. 156 (4). P. 506-514
- Costa J. C.M. et al. Increase in biofi lm formation by Escherichia coli under conditions that mimic the mastitic mammary gland//Ciencia Rural. 2014. Vol. 44, №. 4. P. 666-671.
- Costerton J. W. et al. Microbial biofilms//Annual. Review Microbiology. 1995. Vol. 49. P. 711-745
- Ferrieres L. Escherichia coli strains during catheter-associated biofilm formation//FEMS Immunology and Medical Microbiology. 2007. Vol. 51 (1). Р. 212-219
- Ghigo J.M. Natural conjugative plasmids induce bacterial biofilm development//Nature. 2001. Vol. 412. P. 442-445
- Melecos M.D., Naber K.G. Complicated urinary tract infections//International Journal Antimicrobial Agents. 2000. Vol. 15. P. 247-256
- Nicolle L.E. Catheter associated urinary tract infections//Antimicrobial Resistance Infection Control. 2014. Vol. 3. P. 1-8
- O'Toole G.A., Kolter R. Flagellar and twitching mo-tility are necessary for Pseudomonas aeruginosa biofilm development//Molecular Microbiology. 1998. Vol. 30. P. 295-304
- Pagedar A. et al. Surface hydrophobicity, nutritional contents affect Staphylococcus aureus biofilms and temperature influences its survival in preformed biofilms//Journal of basic microbiology. 2010. Vol. 50. P. 98-106
- Pickard R. et al. Types of urethral catheter for reducing symptomatic urinary tract infections in hospitalised adults requiring short-term catheterisation: multicentre randomised controlled trial and economic evaluation of antimicrobial-and antiseptic-impregnated urethral catheters (the CATHETER trial)//Health Technology Assessment. 2012. № 16 (47). P. 1-197
- Romeo T. (ed.) Bacterial biofilms. Hidelberg: Springer, 2008. 295 р
- Rosenberg М. et al. Adherence of bacteria to hydrocarbons: A simple method for measuring cell surface hydrophobicity//FEMS Microbiology Letters. 1980. Vol. 9. P. 9-33
- Russell J.C. Bacteria, biofilm and devices: the role of Phosphorylcholine (pc) materials//Journal En-dourology. 2000. Vol. 14 (1). P. 39-42
- Schilling А.Т. The effect of pH on the bacterium E. coli. California State Science Fair, 2008
- Stickler D. Bacterial biofilms in patients with indwelling urinary catheters//Natural Clinical Practice Urology. 2008. Vol. 5, № 11.Р. 598-608
- Van Loosdrecht M. C.M et al. The role of bacterial cell wall hydrophobicity in adhesion//Applied Environmental Microbiology. 1987. Vol. 53 (8). P. 1893-1897
Статья научная
