Дисперсия моно- и смешанных биопленок Alcaligenes faecalis 2 и Rhodococcus ruber GT 1

Автор: Зорина Анастасия Сергеевна, Максимова Юлия Геннадьевна

Журнал: Вестник Пермского университета. Серия: Биология @vestnik-psu-bio

Рубрика: Микробиология

Статья в выпуске: 2, 2019 года.

Бесплатный доступ

Изучена дисперсия моно- и смешанных биопленок Al. faecalis 2 и R. ruber gt 1, обладающих нитрилгидролизующей активностью. Дисперсию оценивали, учитывая два параметра: 1) различный возраст биопленки; 2) время экспозиции выращенной биопленки в физиологическом растворе без питательных веществ. Показано, что наименее устойчивыми являются 7-суточные монопленки изученных штаммов, дисперсия которых превышает таковую смешанной биопленки на порядок и более. При сравнении абсолютного количества мигрировавших клеток было показано, что клетки R. ruber gt 1 мигрируют из монопленки гораздо интенсивнее, чем из смешанной. В смешанной культуре наиболее подвержены разрушению 4-суточные биопленки Al. faecalis 2 и R. ruber gt 1, что соответствует моменту наиболее интенсивной адгезии микроорганизма-спутника (R. ruber gt 1) к первичному колонизатору (Al. faecalis 2). Показано, что при дальнейшем совместном росте наступает фаза адаптации, которая выражается в формировании прочной смешанной биопленки, что позволяет эффективно использовать их в биотехнологических процессах.

Еще

Биопленки, нитрилгидролизующие бактерии, дисперсия биопленки

Короткий адрес: https://sciup.org/147227076

IDR: 147227076   |   DOI: 10.17072/1994-9952-2019-2-153-158

Список литературы Дисперсия моно- и смешанных биопленок Alcaligenes faecalis 2 и Rhodococcus ruber GT 1

  • Зорина А.С., Максимова Ю.Г., Демаков В.А. Биопленкообразование моно- и смешанных культур штаммов Alcaligenes faecalis 2 и Rhodococcus ruber gt 1 // Микробиология. 2019. Т. 88, № 2. С. 175-183.
  • Максимова Ю.Г., Максимов А.Ю., Демаков В.А. Биопленки нитрилгидролизующих бактерий: динамика роста, устойчивость к токсичным веществам и биотехнологический потенциал // Биотехнология. 2015. № 4. С. 39-51.
  • Максимова Ю.Г. Микробные биопленки в биотехнологических процессах // Биотехнология. 2013. № 4. С. 9-23.
  • Burmølle M. et al. Interactions in multispecies biofilms: do they actually matter // Trends in Microbiology. 2014. Vol. 22, № 2. P. 84-91.
  • Carrel M. et al. Biofilms in 3D porous media: Delineating the influence of the pore network geometry, flow and mass transfer on biofilm development // Water Research. 2018. Vol. 134. P. 280-291.
  • Chen D., Zhao T., Doyle M.P. Single- and mixed-species biofilm formation by Escherichia coli O157:H7 and Salmonella, and their sensitivity to levulinic acid plus sodium dodecyl sulfate // Food Control. 2015. Vol. 57. P. 48-53.
  • Chen J. et al. Microbial transformation of nitriles to high-value acids or amides // Advances in Biochemical Engineering / Biotechnology. 2009. Vol. 113. P. 33-77.
  • Derlon N. et al. Growth limiting conditions and denitrification govern extent and frequency of volume detachment of biofilms // Chemical Engineering Journal. 2013. Vol. 218. P. 368-375.
  • Desmond P. et al. Stratification in the physical structure and cohesion of membrane biofilms - Implications for hydraulic resistance //Journal of Membrane Science. 2018. Vol. 564. P. 897-904.
  • Dufour D., Leung V., Levesque C.M. Bacterial biofilm: structure, function, and antimicrobial resistance // Endodontic Topics. 2012. Vol. 22. P. 2-16.
  • Ju X. et al. Effect of the luxS gene on biofilm formation and antibiotic resistance by Salmonella serovar Dublin // Food Research International. 2018. Vol. 107. P. 385-393.
  • Marić S., Vraneš J. Characteristics and significance of microbial biofilm formation // Periodicum Biologorum. 2007. Vol. 109, № 2. P. 1-7.
  • Omar A. et al. Microbial biofilms and chronic wounds // Microorganisms. 2017. Vol. 5. P. 1-15.
  • Paul E.et al. Effect of shear stress and growth conditions on detachment and physical properties of biofilms // Water Research. 2012. Vol. 46. P. 5499-5508.
  • Petrova O.E., Sauer K. Escaping the biofilm in more than one way: desorption, detachment or dispersion // Current Opinion in Microbiology. 2016. Vol. 30. P. 67-78.
  • Rittmann B.E. Biofilms, active substrata, and me // Water Research. 2018. Vol. 132. P. 135-145.
  • Røder H.L. et al. Interspecies interactions result in enhanced biofilm formation by co-cultures of bacteria isolated from a food processing environment // Food Microbiology. 2015. Vol. 51. P. 18-24
  • Solano C., Echeverz M., Lasa I. Biofilm dispersion and quorum sensing // Current Opinion in Microbiology. 2014. Vol. 18. P. 96-104.
  • Thornhill S.G., Kumar M. Biological filters and their use in potable water filtration systems in space-flight conditions // Life Sciences in Space Research. 2018. Vol. 17. P. 40-43.
  • Walter M. et al. Detachment characteristics of a mixed culture biofilm using particle size analysis // Chemical Engineering Journal. 2013. Vol. 228. P. 1140-1147.
Еще
Статья научная