Адаптация растений-регенерантов пшеницы к условиям ex vitro: работа устьиц

Автор: Мартыненко Елена Викторовна, Круглова Наталья Николаевна, Дубровная Оксана Васильевна

Журнал: Известия Самарского научного центра Российской академии наук @izvestiya-ssc

Рубрика: Биотехнология

Статья в выпуске: 5-3 т.13, 2011 года.

Бесплатный доступ

Исследован устьичный аппарат листьев регенерантов пшеницы, полученных в условиях высокой влажности и низкой освещенности in vitro, в процессе их постепенной адаптации к условиям пониженной влажности воздуха и высокой освещенности ex vitro. Установлено, что к концу эксперимента регенеранты ex vitro и интактные растения имели сходные значения устьичной проводимости. Сравнительный цитологический анализ устьиц адаптированных ex vitro регенерантов и интактных растений in vivo продемонстрировал их морфологическое сходство при меньших размерах устьиц регенерантов. Предложенный способ постепенной адаптации к условиям ex vitro позволяет добиваться высокой выживаемости регенерантов.

Еще

Выживаемость регенерантов, устьичная проводимость, яровая мягкая пшеница triticum aestivum l, адаптация

Короткий адрес: https://sciup.org/148200434

IDR: 148200434

Список литературы Адаптация растений-регенерантов пшеницы к условиям ex vitro: работа устьиц

  • Sallanon H., Tort M., Coudret A. The ultrastructure of micropropagated and greenhouse rose plant stomata//Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 1993. V. 32 P. 227-233.
  • Pospisilova J. Effect of air humidity on the development of functional stomatal apparatus//Biologia Plantarum. 1996. V. 38. № 2. P. 197-204.
  • Noe N., Bonini L. Leaf anatomy of highbush blueberry grown in vitro and during acclimatization to ex vitro conditions//Biologia Plantarum. 1996. V. 38. № 1. P. 19-25.
  • Fordham M.C., Harrison-Murray R., Knight L. Effects of leaf wetting and high humidity on stomatal function in leafy cutting and intact plants of Corylus maxima//Physiologia Plantarum. 2001. V. 113. P. 233-240.
  • Joshi P., Joshi N., Purohit S.D. Stomatal characteristics during micropropagation of Wrightia tomentosa//Biologia Plantarum. 2006. V. 50. № 2. P. 275-278.
  • Характеристика сортов сельскохозяйственных культур, включенных в Госреестр по Республике Башкортостан. Пособие для агрономов/[под ред. Д.Б. Гареева]. Уфа, 1997. 96 с.
  • Паушева З.П. Практикум по цитологии растений. М.: Колос, 1988. 170 с.
  • Plant biotechnology and molecular markers/[Eds Srivastava S., Narula A., Srivastava S.]. New Delhi: Anamaya Publishers, 2004. P. 325.
  • Plant cell and tissue culture -a tool in biotechnology. Basics and application/[Eds Neumann K.-H., Kumar A., Imani J.]. Berlin, Heidelberg: Springer-Verlag, 2009. P. 333.
  • Gribble K., Sarafis K., Nailon J., Holford P., Uwins P. Environmental scanning electron microscopy of the surface of normal and leaves of Gypsophila paniculata (Babies, Breath) cultured in vitro//Plant Cell Reports. 1996. V. 15 P. 771-776.
  • Ali-Ahmad M., Hughes G.H., Safadi F. Studies on stomatal function, epicuticular wax and stem-root transition region of polyethylene glycol-treated and nontreated in vitro grape plantlets//In vitro Cellular and Developmental Biology Plant. 1998. V. 34. P. 1-7.
  • Estrada-Luna A.A., Davies Jr F.T., Egilla J.N. Physiological changes and growth of micropropagated chille ancho pepper plantlets during acclimatization and post-acclimatization//Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 2001. V. 66. P. 17-24.
  • Brutti C.B., Rubio E.J., Llorente B.E., Apostolo N.M. Artichoke leaf morphology and surface features in different micropropagation stages//Biologia Plantarum. 2002. V. 45. № 2. P. 197-204.
  • Jo E.-A., Tewari R.K., Hahn E.-J., Paek K.-Y. In vitro sucrose concentration affects growth and acclimatization of Alocasia amazonica plantlets//Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 2009. V. 96. P. 307-315.
Еще
Статья научная