Особенности содержания некоторых гормонов и рецепторов в опухоли и перифокальной зоне у самок мышей BALB/C NUDE с первично-множественным злокачественным процессом, развивающимся на фоне первичного иммунодефицита

Особенности содержания некоторых гормонов и рецепторов в опухоли и перифокальной зоне у самок мышей BALB/C NUDE с первично-множественным злокачественным процессом, развивающимся на фоне первичного иммунодефицита

Автор: Франциянц Е.М., Бандовкина В.А., Каплиева И.В., Сурикова Е.И., Шлык С.В., Нескубина И.В., Погорелова Ю.А., Трепитаки Л.К., Котиева И.М., Шумарин К.А.

Журнал: Ульяновский медико-биологический журнал @medbio-ulsu

Рубрика: Физиология

Статья в выпуске: 3, 2022 года.

Бесплатный доступ

Одной из причин развития первично-множественных злокачественных образований является первичный иммунодефицит. Цель. Изучение уровня некоторых гормонов и их рецепторов в ткани и перифокальной зоне меланомы B16/F10 и карциномы легкого Льюиса (LLC) при самостоятельном и сочетанном подкожном росте у самок мышей с Т-клеточным иммунодефицитом. Материалы и методы. Мыши BALB/c Nude были распределены на группы: интактная; 2 контрольные группы: 1-я - со стандартной подкожной перевивкой меланомы B16/F10, 2-я - с подкожной перевивкой LLC; основная - животные с сочетанной перевивкой LLC и B16/F10 (ПМЗО). Методом ИФА определяли содержание свободной формы тестостерона (Тсв.), эстрона (Е1), пролактина (ПРЛ), рецепторов эстрогенов - REa и RE/3, рецепторов андрогенов (RA) и рецепторов прогестерона (RP4) (Cassabio, Китай). Статистическую обработку полученных результатов проводили на персональном компьютере посредством программы STATISTICA 10.0 при помощи параметрического критерия Стьюдента и непараметрического критерия Вилкоксона - Манна - Уитни. Результаты. В основной группе на фоне увеличения объемов меланомы в 1,8 раза и уменьшения LLC в 2,3 раза сокращалась продолжительность жизни. У животных с ПМЗ О по сравнению с одиночным вариантом роста в опухолях снижался уровень эстрона, но повышалось содержание свободного тестостерона. Увеличение объема меланомы при ПМЗО сопровождалось повышением уровня пролак-тина и некоторых рецепторов половых стероидов в ткани опухоли, ее перифокальной зоне и коже, не пораженной злокачественным процессом. Уменьшение размеров карциномы Льюиса у самок основной группы сопровождалось снижением как в опухоли, так и в ее перифокальной зоне содержания практически всех исследованных рецепторов и гормонов. Выводы. Увеличение объема меланомы, вероятно, связано с высоким содержанием пролактина и рецепторов половых стероидов в непораженной коже как источнике меланоцитов - клеток, из которых развивается данная опухоль.

Еще

Меланома b16/f10, карцинома льюиса (llc), первично-множественные злокачественные опухоли (пмзо), мыши balb/c nude

Короткий адрес: https://sciup.org/14125351

IDR: 14125351   |   DOI: 10.34014/2227-1848-2022-3-129-141

Список литературы Особенности содержания некоторых гормонов и рецепторов в опухоли и перифокальной зоне у самок мышей BALB/C NUDE с первично-множественным злокачественным процессом, развивающимся на фоне первичного иммунодефицита

  • Xu L.L., Gu K.S. Clinical retrospective analysis of cases with multiple primary malignant neoplasms. Genet. Mol. Res. 2014; 13 (4): 9271-9284.
  • Nyqvist J., Parris T.Z., Helou K., Sarenmalm E.K., Einbeigi Z., Karlsson P., Nasic S., Kovacs A. Previously diagnosed multiple primary malignancies in patients with breast carcinoma in Western Sweden between 2007 and 2018. Breast Cancer Res Treat. 2020; 184 (1): 221-228.
  • De Luca A., Frusone F., Vergine M., Cocchiara R., La Torre G., Ballesio L., Monti M., Amabile M.I. Breast cancer and multiple primary malignant tumors: case report and review of the literature. In vivo. 2019; 33 (4): 1313-1324.
  • Zheng Y, Sun Y, Kuai Y, Fu G., An H., Chen J., Zhu J., Wo Y, Wu Y, Song K., Xu Q., Wu D, Huang D, Wang Q., Pan H. Gene expression profiling for the diagnosis of multiple primary malignant tumors. Cancer Cell Int. 2021; 21 (1): 47.
  • Ly M., Zhang X., Shen Y., Wang F., Yang J., Wang B., Yang J. Clinical analysis and prognosis of synchronous and metachronous multiple primary malignant tumors. Medicine. 2017; 96 (17): e6799.
  • Thaventhiran J., Lango Allen H., Burren O.S., Rae W., Greene D., Staples E., Zhang Z., Farmery J., Simeoni I., Rivers E., Maimaris J., Penkett C.J., Stephens J., Deevi S., Sanchis-Juan A., Gleadall N.S., ThomasM.J., SargurR.B., GordinsP., BaxendaleH.E., Smith K. Whole-genome sequencing of a sporadic primary immunodeficiency cohort. Nature. 2020; 583 (7814): 90-95.
  • Bousfiha A., Jeddane L., Picard C., Ailal F., Bobby Gaspar H., Al-Herz W., Chatila T., Crow Y.J., Cun-ningham-Rundles C., Etzioni A., Franco J.L., HollandS.M., Klein C., Morio T., Ochs H.D., Oksenhendler E., Puck J., Tang M.L.K., Tangye S.G., Torgerson T.R., Casanova J.L., Sullivan K.E. The 2017 IUIS Phenotypic Classification for Primary Immunodeficiencies. J. Clin. Immunol. 2018; 38: 129-143.
  • Mastio J., Saeed M.B., Wurzer H., Krecke M., Westerber L.S., Thomas C. Higher Incidence of B Cell Malignancies in Primary Immunodeficiencies: A Combination of Intrinsic Genomic Instability and Exo-cytosis Defects at the Immunological Synapse. Frontiers in immunology. 2020; 11: 581119.
  • Mayor P.C., Eng K.H., Singel K.L., Abrams S., Odunsi K., Moysich K.B., Fuleihan R., Garabedian E., Lugar P., Ochs H.D., Bonilla F.A., Buckley R.H., Sullivan K.E., Ballas Z.K., Cunningham-Rundles C., Segal B.H. Cancer in primary immunodeficiency diseases: Cancer incidence in the United States Immune Deficiency Network Registry. J. Allergy Clin. Immunol. 2018; 141 (3): 1028-1035.
  • Трещалина Е.М., Жукова О.С., Герасимова Г.К., Андронова Н.В., Гарин А.М. Методические рекомендации по доклиническому изучению противоопухолевой активности лекарственных средств. Руководство по проведению доклинических исследований лекарственных средств. Ч. 1. Москва: Гриф и К; 2012: 642-657.
  • Kelland L.R. «Of mice and men»: values and liabilities of the athymic nude mouse model in anticancer drug development. Eur. J. Cancer. 2004; 40 (6): 827-836.
  • Кит О.И. Нейроэндокринные, клинические и морфологические аспекты рака желудка. Новочеркасск; 2014.
  • Бандовкина В.А., Франциянц Е.М., Погорелова Ю.А., Черярина Н.Д. Особенности стероидогенеза в опухоли и окружающих тканях при экспериментальной меланоме В16. Молекулярная медицина. 2015; 5: 47-51.
  • Франциянц E^., Каплиева И.В., Бандовкина В.А., Сурикова Е.И., Нескубина И.В., Трипитаки Л.К., Погорелова Ю.А., Черярина Н.Д., Шейко Е.А., Котиева И.М., Шумарин К.А. Моделирование первично-множественных злокачественных опухолей в эксперименте. Южно-Российский онкологический журнал. 2022; 3 (2): 14-21.
  • Сидоренко Ю.С., Франциянц Е.М., Комарова Е.Ф., Погорелова Ю.А., Шихлярова А.И. Патент РФ № 2375758 C1; 2009.
  • Кит О.И., Котиева И.М., Франциянц Е.М., Каплиева И.В., Трепитаки Л.К., Бандовкина В.А., Нескубина И.В., Сурикова Е.И., Черярина Н.Д., Погорелова Ю.А., Немашкалова Л.А. Влияние хронической нейропатической боли на течение злокачественного процесса меланомы в16/й0 у самцов мышей. Известия высших учебных заведений. Северо-Кавказский регион. Серия: Естественные науки. 2019; 1 (201): 106-111.
  • Auriemma R.S., Del Vecchio G Scairati R., Pirchio R., Liccardi A., Verde N., Cristina de Angelis, Davide Menafra, Claudia Pivonello, Alessandro Conforti, Carlo Alviggi, Rosario Pivonello, Annamaria Colao. The Interplay Between Prolactin and Reproductive System: Focus on Uterine Pathophysiology. Front Endocrinol (Lausanne). 2020; 11: 594370.
  • Yang H., Lin J., Li H., Liu Z., ChenX., Chen Q. Prolactin Is Associated With Insulin Resistance and Beta-Cell Dysfunction in Infertile Women With Polycystic Ovary Syndrome. Front Endocrinol (Lausanne). 2021; 12: 571229.
  • Studerus E., lttig S., Beck K., Del Cacho N., Vila-Badia R., Butjosa A., Usall J., Riecher-Rossler A. Relation between self-perceived stress, psychopathological symptoms and the stress hormone prolactin in emerging psychosis. J. Psychiatr. Res. 2021; 136: 428-434.
  • Bellenghi M., Puglisi R., Pontecorvi G., De Feo A., Card A., Mattia G. Sex and Gender Disparities in Melanoma. Cancers. 2020; 12 (7): 1819.
  • De Giorgi V., Gori A., Gandini S., Papi F., Grazzini M., Rossari S., Simoni A., Maio V., Massi D. Oestrogen receptor beta and melanoma: A comparative study. Br. J. Dermatol. 2013; 168: 513-519.
  • Contrd V., Basile J.R., Proia P. Sex steroid hormone receptors, their ligands, and nuclear and non-nuclear pathways. AIMS Mol. Sci. 2015; 2: 294-310.
  • Mitkov M., Joseph R., Copland J. III Steroid hormone influence on melanomagenesis. Mol. Cell. Endocrinol. 2015; 417: 94-102.
  • Morvillo V., Luthy I.A., Bravo A.I., Capurro M.I., Portela P., Calandra R.S., Mordoh J. Androgen receptors in human melanoma cell lines IIB-MEL-LES and IIB-MEL-IAN and in human melanoma metastases. Melanoma Res. 2002; 12: 529-538.
  • Xu S., Sun J., Zhang Y., Ji J., SunX. Opposite estrogen effects of estrone and 2-hydroxyestrone on MCF-7 sensitivity to the cytotoxic action of cell growth, oxidative stress and inflammation activity. Ecotoxicol Environ Saf. 2021; 209: 111754.
  • Sawicka E., Saczko J., Roik J., Kulbacka J., Piwowar A. Effect of Interaction between 17p-Estradiol, 2-Methoxyestradiol and 16a-Hydroxyestrone with Chromium (VI) on Ovary Cancer Line SKOV-3. Preliminary Study Molecules. 2020; 25 (21): 5214.
  • Xu Q., Chen J., Wei Z., Brandon T., Zava D., Shi Y., Cao Y. Sex Hormone Metabolism and Threatened. Abortion Med. Sci. Monit. 2017; 23: 5041-5048.
Еще
Статья научная
SciUp 2024 © 2024 ©