Оценка влияния микрофлоры объектов окружающей среды на возможность внестационарной колонизации дыхательных путей пациентов с муковисцидозом

Автор: Кондратенко Ольга Владимировна

Журнал: Ульяновский медико-биологический журнал @medbio-ulsu

Рубрика: Общая биология

Статья в выпуске: 4, 2018 года.

Бесплатный доступ

Цель исследования - оценка возможных рисков микробной колонизации дыхательных путей пациентов с муковисцидозом. Материалы и методы. Было проведено микробиологическое исследование 176 проб от членов семьи пациента и смывов с объектов с места проживания 17 семей Самарской области, в которых проживают пациенты с муковисцидозом. Посев каждой пробы осуществляли на следующие питательные среды: 5 % кровяной агар, универсальная хромогенная среда, OFPBL-агар для элективного выделения бактерий B. серааа complex, шоколадный агар, среда Сабуро для культивирования грибов. Посевы инкубировали при 37 и 28 °С в течение 24-48 ч. Посевы на средах OFPBL и Сабуро оставляли до 14 сут культивирования. Идентификацию выделенных культур проводили с помощью MALDI-Tof-масс-спектрометрии на приборе Microflex, Bruker. Результаты. Выделено 404 штамма микроорганизмов. Среди них - значительное количество штаммов неферментирующих грамотрицательных бактерий, имеющих клиническое значение при муковисцидозе, в т...

Еще

Муковисцидоз, окружающая среда, дыхательные пути, бактерии

Короткий адрес: https://sciup.org/14113386

IDR: 14113386   |   DOI: 10.23648/UMBJ.2018.32.22705

Список литературы Оценка влияния микрофлоры объектов окружающей среды на возможность внестационарной колонизации дыхательных путей пациентов с муковисцидозом

  • Проворов Н.А., Тихонович И.А., ред. Генетические основы эволюции бактерий – симбионтов растений. СПб.: Информ-Навигатор; 2016. 240.
  • Goerke C., Kraning K., Stern M. Molecular epidemiology of community-acquired Staphylococcus aureus in families with and without cystic fibrosis patients. J. Infect. Dis. 2000; 181: 984–989.
  • Von Eiff C., Becker K., Machka K. Nasal carriage as a source of Staphylococcus aureus bacteriemia. Study Group. N. Engl. J. Med. 2001; 344: 11–16.
  • Botzenhart K., Doring G. Epidemiology and ecology of Pseudomonas aeruginosa. In: Campa M., Bendinelli M., Friedman H., eds. Pseudomonas aeruginosa as an opportunistic pathogen. New York: Plenum; 1993: 1–18.
  • Doring G., Ulrich M., Muller W. Generation of Pseudomonas aeruginosa aerosols during handwashing from contaminated sink drains, transmission to hands of hospital personnel, and its prevention by use of a new heating device. Zentralbl. Hyg. 1991; 191: 494–505.
  • Bosshammer J., Fiedler B., Gudowius P. Comparative hygienic surveillance of contamination with pseudomonads in cystic fibrosis ward over a 4-year period. J. Hosp. Infect. 1995; 31: 261–274.
  • Pitchford K.C., Corey M., Highsmith A.K. Pseudomonas species contamination of cystic fibrosis patients home inhalation equipment. J. Pediatr. 1987; 111: 212–216.
  • Rosenfield M., Emerson J., Astley S. Home nebulizer use among patients with cystic fibrosis. J. Pediatr. 1998; 132: 125–131.
  • Jakobsson B.M., Onnered A.B., Hjelte L. Low bacterial contamination of nebulizers in home treatment of cystic fibrosis patients. J. Hosp. Infect. 1997; 36: 201–207.
  • Jensen E.T., Gewercman B., Ojeniyi B. Epidemiology of Pseudomonas aeruginosa in cystic fibrosis and the possible role of contamination by dental equipment. J. Hosp. Intect. 1997; 36: 117–122.
  • Halabi M., Wiesholzer-Pittl M., Schoberl J. Non-touch fitting in hospitals: a possible source of Pseudomonas aeruginosa and Legionella spp. J. Hosp. Infect. 2001; 49: 117–121.
  • LiPuma J.J. The Changing Microbial Epidemiology in Cystic Fibrosis. Clin. Microbiol. Rev. 2010; 23 (2): 299–323.
  • Romling U., Wingender J., Muller H., Tummler B. A major Pseudomonas aeruginosa clone common to patients and aquatic habitats. Appl. Environ. Microboil. 1994; 60: 1734–1738.
  • Doring G., Hoiby N. Early intervention and prevention of lung disease in cystic fibrosis: a European consensus. J. Cyst. Fibrosis. 2004; 3: 67–91.
  • Campana S., Tacetti G., Ravenni F. Tramsmission of Burkholderia cepacia complex: evidence for new epidemic clones infecting cystic fibrosis patients in Italy. J. Clin. Microbiol. 2005; 43: 5136–5142.
  • Coenye T., Spilker T., Van Schoor A. Recovery of Burkholderia cenocepacia strain PHDC from cystic fibrosis patients in Europe. Thorax. 2004; 59: 952–954.
  • Fisher M.C., LiPuma J.J., Dasen E. Source of Pseudomonas cepacia: ribotyping of isolated from patients and from the environment. J. Pediatr. 1993; 123: 745–747.
  • LiPuma J.J., Spilker T., Coenye T. An epidemic Burkholderia cepacia complex strain identificied in soil. Lancet. 2003; 359: 2002–2003.
  • Govan J.R., Brown A.R., Jones A.M. Evolving epidemiology of Pseudomonas aeruginosa and the Burkholderia cepacia complex in cystic fibrosis lung infection. Future Microbiol. 2007; 2: 153–164.
  • Mortensen J.E., Fischer M.C., LiPuma J.J. Recovery of Pseudomonas cepacia and other Pseudomonas species from the environment. Infect. Control. Hosp. Epidemoil. 1995; 16: 30–32.
  • Baldwin A., Mahenthiralingam E., Drevenik P. Environmental Burkholderia cepacia complex isolated in human infections. Emerg. Infect. Dis. 2007; 13: 458–461.
Еще
Статья научная